Asesoria

Descripción

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Mini-Pam-II entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Analizador de rendimiento de fotosíntesis

La sensibilidad, las dimensiones pequeñas, la confiabilidad en condiciones difíciles y la ejecución simple del análisis de fluorescencia hacen del MINI-PAM-II el estándar para la fluorometría PAM en la investigación de campo. El MINI-PAM II combina fibra óptica probada con la tecnología informática y LED más moderna. Una pantalla táctil legible al sol sirve como interfaz fácil de usar para estudios de campo. El fluorómetro calcula y muestra automáticamente todos los parámetros relevantes del análisis del pulso de saturación.

El nuevo clip de hojas MINI-PAM II/POROMETER complementa el análisis con información precisa sobre la evaporación del agua, la conductancia estomática y otros parámetros importantes para comprender la función estomática y el rendimiento fotosintético.

Aplicaciones:

  • Estudios fisiológicos de plantas: La fluorometría de clorofila se utiliza para estudiar la respuesta de las plantas a diferentes condiciones ambientales, como la luz, la temperatura, la disponibilidad de agua y nutrientes, así como el estrés abiótico y biótico.
  • Evaluación del estrés vegetal: Permite detectar y cuantificar el estrés en las plantas antes de que los síntomas sean visibles, lo que facilita la adopción de medidas preventivas.
  • Control de calidad de cultivos agrícolas: La medición de la fluorescencia de la clorofila se utiliza para evaluar la salud y el rendimiento de los cultivos, así como para optimizar las prácticas de cultivo.
  • Investigación en biología vegetal y ecología: Se emplea para estudiar la fisiología de las plantas, la interacción planta-microorganismo, la dinámica de la vegetación y la respuesta de los ecosistemas a los cambios ambientales.
  • Monitorización ambiental: La fluorometría de clorofila se utiliza en estudios de calidad del agua, evaluación de la salud de los ecosistemas acuáticos y detección de la contaminación por nutrientes y productos químicos.

Beneficios:

  • No destructiva: Permite realizar mediciones repetidas en el mismo individuo vegetal sin dañarlo.
  • Sensibilidad: La fluorescencia de la clorofila es una medida sensible de la eficiencia fotosintética y el estado fisiológico de las plantas.
  • Rapidez y facilidad de uso: La fluorometría de clorofila es una técnica relativamente rápida y sencilla que proporciona resultados cuantitativos.
  • Información en tiempo real: Permite realizar mediciones en el campo, proporcionando información instantánea sobre la salud de las plantas y los ecosistemas.

Propiedades sobresalientes del MINI-PAM-II

  • Carcasa compacta con ordenador integrado.
  • Sensor PAR interno
  • Versiones de luz roja y azul, ambas con luz roja lejana

Características Generales MINI-PAM-II

Las fuentes LED de bajo consumo, la capacidad de almacenamiento para 27.000 conjuntos de datos y las baterías disponibles en el mercado, fácilmente reemplazables, permiten realizar mediciones prolongadas en lugares remotos.

La luz roja lejana (LED de 735 nm) del MINI-PAM-II excita preferentemente el fotosistema I, pero su radiación es absorbida de forma insignificante por el fotosistema II. Una rutina de medición especial utiliza esta luz roja lejana para determinar el nivel de fluorescencia F 0 ' , que es importante para evaluar correctamente el estado redox de los centros de reacción del fotosistema II.

Ampliable mediante accesorios como varios clips para hojas, lámpara multicolor externa, espectrómetro en miniatura, cubeta de suspensión, sensor óptico de oxígeno y escáner de código de barras.

En experimentos que utilizan luz actínica interna, la intensidad de la luz a nivel de muestra se puede monitorear en línea mediante un sensor de luz interno. Este sensor interno debe calibrarse con respecto a un sensor de luz externo.

VERSIONES

AZUL Y ROJO MINI-PAM-II/B y MINI-PAM-II/R

El color de la luz emitida por el LED primario distingue la versión AZUL de la ROJA del fluorómetro MINI-PAM-II (Fig. 1). La versión AZUL (MINI-PAM-II/B) posee un LED azul que emite un máximo de alrededor de 475 nm que se reemplaza por un LED rojo que emite un máximo de alrededor de 655 nm en la versión ROJA (MINI-PAM-II/R). Ambas versiones tienen un segundo LED que proporciona luz roja lejana para la excitación específica del fotosistema I.

La segunda diferencia entre las dos versiones es la ventana espectral para la detección de fluorescencia. La versión AZUL detecta fluorescencia en longitudes de onda > 630 nm, mientras que la versión ROJA detecta fluorescencia en longitudes de onda > 700 nm..

mini-pam-II-1.1-kasalab-colombia.pngFigura 1: Espectros de emisión de LED típicos normalizados a sus máximos. La curva azul corresponde al espectro del LED azul del MINI-PAM-II/B, la curva roja representa el LED rojo del MINI-PAM-II/R. Ambas versiones MINI-PAM-II poseen un LED rojo lejano que emite como máximo alrededor de 735 nm (curva más a la derecha). Se muestran la longitud de onda máxima y el ancho total a la mitad del máximo (entre corchetes) en nm.
mini-pam-II-1.2-kasalab-colombia.pngFigura 2: Espectros de transmitancia de los filtros de detección en MINI-PAM-II-B (versión AZUL, línea roja) y MINI-PAM-II/R (versión ROJA, línea roja oscura).

¿Versión AZUL o ROJA?

  • Su rango ampliado de detección de fluorescencia hace que la versión AZUL sea más sensible que la versión ROJA. En muestras con alto contenido de clorofila, una gran parte de la fluorescencia de longitud de onda corta, que potencialmente puede detectarse con la versión AZUL, es reabsorbida por la clorofila. Por lo tanto, en tales muestras la sensibilidad de la versión AZUL es sólo ligeramente mejor que la de la ROJA.
  • El MINI-PAM-II se puede utilizar para investigar cianobacterias. Las cianobacterias suelen absorber mal el azul. Por lo tanto, en estudios de cianobacterias normalmente se prefiere la versión ROJA a la versión AZUL, que produce relaciones señal-ruido bajas con cianobacterias.
  • La fuente de luz actínica azul del MINI-PAM-II/B excita la amplia banda de longitud de onda corta del principal complejo captador de luz del fotosistema II en plantas superiores y algas verdes (LHC II). La luz roja del MINI-PAM-II/R excita la banda de longitud de onda larga, comparativamente menor, del LHC II. Por lo tanto, si la excitación del LHC II es importante, la versión AZUL puede resultar ventajosa.
  • El azul es absorbido por fotorreceptores de luz azul que pueden estimular respuestas como el movimiento de los estomas y la reubicación de los cloroplastos en las plantas superiores. La reubicación de cloroplastos puede afectar la señal de fluorescencia al cambiar la eficiencia de la absorción de luz. Este efecto es difícil de distinguir de otros mecanismos de extinción de la fluorescencia. La elección de la versión ROJA excluye dichos efectos de luz azul.

Aplicaciones

Analizador de rendimiento de fotosíntesis MINI-PAM-II: Configuración estándar

Medición simultánea de fluorescencia PAM, PAR, temperatura de las hojas y humedad relativa

El MINI-PAM-II combinado con el clip de hojas digital 2035-B mide simultáneamente la fluorescencia PAM, la radiación fotosintéticamente activa (PAR), la temperatura de las hojas y la humedad del aire.

El presente experimento demuestra cómo varían estos parámetros durante un día de primavera parcialmente nublado. La muestra fotosintética fue una hoja adjunta de Ilex aquifolia que crecía en el jardín de Walz Company.

mini-pam-II-2.1-kasalab-colombia.jpgFigura 1: Rendimiento cuántico efectivo de la fotoquímica del fotosistema II (Y(II)) de una hoja de acebo adherida ( 
Ilex aquifolium ) y radiación fotosintéticamente activa (PAR) durante un día de primavera parcialmente nublado. Durante la primera mitad del día, la PAR aumentó ocasionalmente a valores alrededor de 500 μmol m(-2) s(-1) y el Y(II) varió de manera opuesta a la PAR.
mini-pam-II-2.2-kasalab-colombia.jpgFigura 2: Humedad relativa del aire y temperatura de las hojas medidas en paralelo con Y(II) y PAR (ver Fig. 1). Como se esperaba, la temperatura del aire aumentó con la PAR y la humedad relativa disminuyó con el aumento de la temperatura.
mini-pam-II-2.3-kasalab-colombia.jpgmini-pam-II-2.3-kasalab-colombia.jpg
Tasas de transporte de electrones (ETR) derivadas de Y (II) y PAR de la Fig. 1 representadas frente a PAR. Los datos ETR resultan de cálculos estándar realizados por el software WinControl-3 o el firmware MINI-PAM-II. La línea curva azul se obtuvo ajustando el modelo de Jassby y Platt (1976, Limnol Oceanogr 21: 540-547) a los datos. Se indican los valores cardinales de la curva de luz: α, pendiente inicial; ETR(MAX), tasa máxima de transporte de electrones; I(K) , PAR de saturación mínima. Estos valores cardinales son útiles para caracterizar el estado de aclimatación a la luz de una muestra. A menudo, en hojas aclimatadas con mucha luz, los parámetros ETR(MAX) e I(K) están elevados.

Software WinControl-3

Características generales e interfaz gráfica de usuario

Además del MINI-PAM-II, el software WinControl-3 opera los fluorómetros MICRO-PAM , MONITORING-PAM , DIVING-PAM-II y JUNIOR-PAM , instrumentos operados por PAM-CONTROL ( MICROSCOPY-PAM , MICROFIBER-PAM y Versión Fibra WATER-PAM ) así como el Fotómetro Universal ULM-500 .

El análisis del pulso de saturación y los protocolos experimentales automatizados se pueden realizar bajo el control del software WinControl-3 pero también mediante el software interno MINI-PAM-II que está activo cuando el MINI-PAM-II se opera de forma autónoma. En este último caso, los parámetros experimentales se ingresan mediante la pantalla táctil transflectiva. Sin embargo, para el registro continuo de fluorescencia y el modelado de curvas de luz se necesita WinControl-3.

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Ventana de curva de inducción: la ventana muestra fluorescencia PAM continua (Ft) como una línea negra. El parámetro de extinción no fotoquímico, NPQ, está dibujado en azul y la tasa de transporte de electrones (ETR) se muestra en rojo.
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Ventana de curva de luz:
 los datos de fluorescencia se trazan frente a PAR. Los puntos rojos representan datos ETR a los que WinControl-3 ajustó el modelo de curva de luz "REG1" (curva roja oscura). Usando color verde, el panel muestra tres tipos de rendimientos cuánticos del fotosistema II: el rendimiento para la fotoquímica (Y(II), en fuerte disminución), para la disipación de calor incontrolada (Y(NO), en disminución gradual) y el rendimiento para la disipación de calor controlada. (Y(NPQ), creciente).
mini-pam-II-3.3-kasalab-colombia.pngVentana de informe: La ventana enumera para cada análisis de pulso de saturación la fecha, la hora, los niveles de fluorescencia, F y Fm', PAR, Y(II) y ETR. Las líneas 6 a 18 son datos de una curva de respuesta a la luz. Los valores cardinales de esta curva están resaltados.
mini-pam-II-3.4-kasalab-colombia.pngVentana de archivos por lotes: los archivos por lotes ejecutan experimentos automáticamente. Cree archivos por lotes utilizando los comandos proporcionados por los menús desplegables (el comando actual es "Encender la luz actínica". Para escribir en el archivo por lotes, haga clic sucesivamente en: Editar > Agregar comando > Fuentes de luz > Luz actínica encendida). También cree archivos por lotes utilizando la grabadora de macros de WinControl-3.
mini-pam-II-3.5-kasalab-colombia.jpgPantalla táctil transflectiva MINI-PAM-II: datos primarios, análisis de extinción, curva de luz, gráfico de pies.

Evaluación de datos

Análisis de pulso de saturación con detección automática y cálculo de parámetros de fluorescencia estándar: F(0) , F(M) , F(0) ' (medido o calculado), F(M) ', F, F(V) /F(M) , q(P) , q(L) , q(N) , NPQ , Y(II), Y(NPQ), Y(NO), ETR.

Exportación de datos

Exporte en formato CSV o TXT las trazas de fluorescencia originales, los datos de análisis de pulsos de saturación y las estimaciones de parámetros de las curvas de respuesta a la luz.

Rutinas automatizadas

Activación repetitiva de muchas funciones del fluorómetro (p. ej., análisis de pulso de saturación, curvas de inducción). Ejecución automática de curvas de luz e inducción, corrección de offset y calibración del sensor de luz interno.

Protocolos de medición definidos por el cliente

Ejecución de procedimientos experimentales personalizados mediante archivos por lotes.

Accesorios para MINI-PAM-II - Configuración estándar

mini-pam-II-4.1-kasalab-colombia.jpgmini-pam-II-4.2-kasalab-colombia.jpgEspectrómetro Miniatura MINI-SPEC/MP
El espectrómetro en miniatura MINI-SPEC/MP registra 
espectros de PAR en el rango visible y rojo lejano. El MINI-SPEC/MP es ideal para estudiar los efectos de las variaciones espectrales de la luz en la fotosíntesis. El espectrómetro también se puede configurar para medir la reflectancia de la muestra, que se puede utilizar como indicador de las propiedades de absorción espectral de la muestra. Otra configuración permite mediciones de espectros de emisión de fluorescencia de muestras donde la excitación de la fluorescencia se produce con luz azul o verde. El suministro incluye un estándar de reflectancia y un cable especial de 160 cm que conecta el MINI-SPEC/MP al MINI-PAM-II.
mini-pam-II-4.3-kasalab-colombia.jpgSoporte de clip de hoja con sensor de luz, temperatura y humedad 2035-B
El clip de hojas 2035-B ha sido diseñado para registrar la temperatura de las hojas, la intensidad de la luz a nivel de muestra y la humedad del aire. El clip mide la radiación fotosintéticamente activa (PAR) mediante un 
mini sensor cuántico LS-C , un termopar NiCr-Ni registra la temperatura de las hojas y un sensor de humedad de tipo capacitivo con temperatura corregida mide la humedad relativa del aire. Los factores de calibración de los sensores PAR y de temperatura se almacenan en la memoria interna del clip de hoja 2035-B. Se puede conectar un segundo sensor PAR al clip de hoja. Los datos medidos se envían como señales digitales al MINI-PAM-II. Para facilitar los estudios en condiciones de campo, las mediciones de fluorescencia se pueden activar presionando el botón de control del clip de hoja 2035-B.
mini-pam-II-4.4-kasalab-colombia.jpgFuente de luz LED externa 2054-L
La fuente de luz externa 2054-L complementa la luz actínica interna de los fluorómetros MINI-PAM-II. El 2054-L se puede conectar fácilmente al clip de hoja 2035-B. La lámpara externa proporciona un pico de luz de 630 nm (rojo), 520 nm (verde) y 452 nm (azul), así como luz blanca. Cada uno de los cuatro canales tiene una densidad de flujo de fotones máxima estándar de 1500 µmol m 
-2 s 
-1 ; la composición de colores se puede ajustar libremente. La fuente de luz está conectada al puerto SYNC del fluorómetro MINI-PAM-II y está controlada por el MINI-PAM-II o por una computadora que ejecuta el software WinControl-3.
mini-pam-II-4.5-kasalab-colombia.jpgKit de conversión 2035-B/RLC para clips de hojas 2030-B/2035-B
El kit 2035-B/RLC protege el área de muestra de los clips de hojas 2030-B/2035-B de la luz externa. El accesorio ha sido diseñado para experimentos de campo que dependen exclusivamente de la fuente de luz interna del fluorómetro. El kit 2035-B/RLC es especialmente adecuado para experimentos de curva de luz rápida (RLC) en estudios al aire libre.
mini-pam-II-4.6-kasalab-colombia.jpgSoporte de Fibra Óptica para Superficies 2060-A
El soporte posiciona la fibra óptica del MINI-PAM-II sobre muestras voluminosas. Combinable con el minisensor cuántico/temperatura 2065-M, para medir la temperatura y la intensidad de la luz.
mini-pam-II-4.7-kasalab-colombia.jpgClip de hoja oscura DLC-8
El clip de hojas DLC-8 permite la aclimatación a la oscuridad de pequeñas áreas de hojas en el campo. La punta de la fibra óptica del MINI-PAM-II encaja exactamente en el puerto DLC-8. Con la punta de fibra insertada, el obturador deslizante del DLC-8 se puede abrir para poder medir los niveles de fluorescencia F(0) y F
mini-pam-II-4.8-kasalab-colombia.jpgmini-pam-II-4.8-kasalab-colombia.jpgClip de hoja de Arabidopsis 2060-B
Clip de aluminio con pequeña zona de medición diseñado para posicionar pequeñas hojas debajo de la fibra óptica del MINI-PAM-II. Cuando se combina con el minisensor cuántico/temperatura 2065-M, se registra la PAR en el nivel de muestra y la temperatura más baja de la hoja.
mini-pam-II-4.9-kasalab-colombia.jpgCubeta de suspensión KS-2500
La cubeta de suspensión incluye un compartimento de muestra de 400 μl fabricado en acero inoxidable con exterior de PVC. La cubeta está equipada con un adaptador de ventana de fibra óptica de 7 mm, un puerto de inyección para jeringas Hamilton y boquillas para conectar un baño de agua de flujo externo para controlar la temperatura.
mini-pam-II-4.10-kasalab-colombia.jpgMini sensor cuántico/temperatura 2065-M
Minisensores cuánticos y de temperatura precisos que se pueden utilizar de forma independiente o en combinación con el clip para hojas de Arabidopsis 2060-B o el soporte de fibra óptica para superficies 2060-A.
mini-pam-II-4.11-kasalab-colombia.jpgAgitador magnético con soporte de fibra óptica MKS-2500
El dispositivo está equipado con una placa agitadora especialmente modificada para centrar y sostener la cubeta de suspensión KS-2500. El agitador magnético MKS-2500 viene con una placa base de metacrilato con barra de soporte para montar fibra óptica encima de la cubeta.
Adaptador Fibra Óptica 90º 2030-B90
El adaptador de fibra óptica de 90º se puede conectar a los clips de hoja 2035-B y 2060-B para colocar la fibra óptica del MINI-PAM-II en un ángulo de 90° con respecto al plano de la hoja.
mini-pam-II-4.12-kasalab-colombia.jpgmini-pam-II-4.13-kasalab-colombia.jpgConfiguración de posicionamiento de hojas DUAL-BA
El DUAL-BA ha sido diseñado para posicionar fácil y rápidamente la fibra óptica de un fluorómetro PAM en hojas adheridas. El accesorio es compatible con los fluorómetros DUAL-PAM/F, MINI-PAM-II y PAM-2500. Incluye un conducto con imán de neodimio montado lateralmente y un tornillo para bloquear la punta de la fibra óptica. Una escuadra formada por una tira de acero para resortes posiciona la hoja delante de la fibra óptica, mientras que la tira de acero es sujetada por el imán del canal. El DUAL-BA incluye una guía de fibra óptica con varilla metálica para montar la guía sobre un soporte.
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Fibra óptica en miniatura MINI-PAM/F1
El MINI-PAM/F1 es útil cuando se deben investigar superficies pequeñas. Consiste en una fibra plástica de una sola capa que tiene un diámetro activo de 2 mm.
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Escáner de código de barras BCS-9590
El escáner de código de barras es el complemento ideal cuando se analizan repetidamente muchas muestras. Simplemente marque sus muestras mediante códigos de barras. Luego, el escáner BCS-9590 escribe para cada análisis de pulso de saturación el ID de la muestra en la memoria del MINI-PAM-II o los datos del informe en WinControl-3. El escáner de código de barras está conectado al puerto COMP 1 o COMP 2 del MINI-PAM-II.
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Trípode compacto ST-2101A
El trípode se utiliza para posicionar el soporte de clip para hojas 2035-B, el mini sensor cuántico/temperatura 2065-M o el clip para hojas de Arabidopsis 2060-B.

Accesorios para MINI-PAM-II: O₂ + Configuración de fluorescencia

El paquete de oxígeno para fluorómetros MINI-PAM-II agrega la capacidad de medir la evolución fotosintética del oxígeno al fluorómetro MINI-PAM-II. El paquete de oxígeno consta del medidor de oxígeno FSO2-1 y el sensor de oxígeno, además de la interfaz FSO2-AK. Los datos de oxígeno y fluorescencia se adquieren en paralelo mediante el fluorómetro MINI-PAM-II o, cuando se conecta a una computadora, mediante el software WinControl-3.

La configuración actual permite mediciones combinadas de oxígeno y fluorescencia con suspensiones. La configuración completa para suspensiones requiere la cubeta KS-2500 que proporciona puertos para el sensor de oxígeno y la fibra óptica MINI-PAM-II. Además, el agitador MKS 2500 garantiza una mezcla eficaz durante las mediciones.

El elemento sensible al oxígeno del sensor de oxígeno es un tinte luminiscente cuya emisión de luz se apaga con oxígeno. Hemos elegido esta tecnología debido a su estabilidad de calibración a largo plazo. Además, el método no consume oxígeno durante las mediciones, lo que minimiza las desviaciones de la línea base.

Configuración para mediciones simultáneas de clorofila y oxígeno. La parte de detección de oxígeno del sistema (FSO2-1) consta de un medidor de oxígeno FireStingO2 y un sensor óptico de oxígeno. El medidor de oxígeno está conectado mediante una interfaz (FSO2-AK) al MINI-PAM-II. La fibra óptica MINI-PAM-II y el sensor de oxígeno se insertan en una cubeta de suspensión KS-2500 que se coloca en un agitador magnético MKS-2500 con soporte de fibra óptica

Accesorios para MINI-PAM-II: MINI-PAM-II/PORÓMETRO

El MINI-PAMII/POROMETER es un nuevo clip de hojas para el MINI-PAM-II para mediciones combinadas de conductancia estomática y fluorescencia de clorofila a. Mide la evaporación del agua y la conductancia estomática de las hojas y acículas de las plantas para determinar la función estomática, que está fuertemente influenciada por los factores de estrés que actúan sobre la planta.

Este nuevo dispositivo es una herramienta poderosa para exámenes rápidos, evaluaciones de estrés de alto rendimiento o análisis detallados de plantas con protocolos bien establecidos como curvas de inducción o curvas de luz. Al ser liviano y compacto, el dispositivo es ideal para la investigación desde el campo hasta los laboratorios. Con el sensor GPS, acelerómetro, giroscopio y magnetoscopio incorporado, el porómetro agrega información geoespacial, incluido el ángulo de incidencia de la radiación solar y el ángulo de la hoja.

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Mediciones con MINI-PAM-II/PORÓMETRO
mini-pam-II-7.2-kasalab-colombia.jpgDetección rápida en el campo
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Datos rápidos y fiables
mini-pam-II-7.4-kasalab-colombia.jpgEscudo oscuro para una fácil determinación de F(V) /F(M)

Propiedades sobresalientes de MINI-PAM-II/PORÓMETRO:

  • Numerosos sensores: sensores de humedad, sensor de temperatura de las hojas, sensores de presión, sensores de flujo, sensor PAR, receptor GPS, acelerómetro, giroscopio, magnetoscopio, sensor de CO(2 ambiental)
  • Bomba muy silenciosa
  • La presión del mecanismo de cierre es ajustable.
  • Escudo oscuro para una fácil determinación F(V) /F(M) y mediciones con intensidades de luz actínica controladas
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Clip de hoja MINI-PAM-II/PORÓMETRO
mini-pam-II-8.2-kasalab-colombia.jpg mini-pam-II-8.2-kasalab-colombia.jpgÁrea de muestra de 1 cm de diámetro
mini-pam-II-8.3-kasalab-colombia.jpgCámara de hojas también adecuada para agujas
Cámara de hojas y sensor PAR

El porómetro entrega sus datos cada segundo. La duración típica de una medición variará según condiciones como el caudal y la muestra. Con un caudal estándar de 100 µmol s -1 y una conductancia estomática esperada de 100 mmol m -2 s -1, la duración promedio de la medición es inferior a 15 segundos. La determinación automática de estabilidad incluida es particularmente útil para mediciones de campo único. Simplemente presione el botón, espere a que los datos cumplan con los criterios de estabilidad y la medición se ejecutará automáticamente. Si se desea se puede incluir una señal acústica.

Especificaciones para MINI-PAM-II

Unidad Optoelectrónica MINI-PAM-II/B (Versión AZUL)Luz de medición: LED azul (470 nm), frecuencias de modulación estándar de 5 a 25 Hz ajustables en incrementos de 5 Hz y 100 Hz, luz de medición PAR en configuración estándar = 0,05 μmol m(-2) s(-1) . Se mide la fluorescencia en longitudes de onda superiores a 630 nm.
Luz actínica: Mismo LED azul que para la medición de luz, PAR actínico máximo = 3000 μmol m(-2) s(-1) , PAR máximo de pulsos de saturación = 6000 μmol m(-2) s(-1) ajustable en incrementos de 500 μmol m(-2) s(-1)
Unidad Optoelectrónica MINI-PAM-II/R (Versión ROJA)Luz de medición: LED rojo (655 nm), frecuencias de modulación y PAR como se describe para MINI-PAM-II/B. Se mide la fluorescencia en longitudes de onda superiores a 700 nm.
Luz actínica: Mismo LED rojo que para medir la luz, PAR máximo de luz actínica y pulsos de saturación como se describe para MINI-PAM-II/B
Unidad optoelectrónica MINI-PAM-II/B y MINI-PAM-II/RLuz roja lejana: emisión máxima a 735 nm
Detección de señal: Fotodiodo PIN protegido por filtros de paso largo y de paso corto
Memoria de datos: Memoria flash, 8 MB, que proporciona memoria para más de 27000 análisis de pulsos de saturación
Pantalla: Pantalla LCD transflectiva en blanco y negro retroiluminada de 160 x 104 puntos (78 x 61 mm) con pantalla táctil resistiva
Puertos: Puertos para fibra óptica, cable USB, fuente de luz externa, clip de hoja 2035-B, auxiliares y fuente de alimentación de 12 V DC
Alimentación: 6 pilas recargables AA (Mignon) (Eneloop 1,2 V/2 Ah), que proporcionan energía para hasta 1000 mediciones de rendimiento; 6 baterías de repuesto, apagado/apagado automático, cargador de baterías (100 a 240 V AC, 50-60 Hz, 0,35 A) para 1 a 8 baterías AA/AAA NI-MH/NI-CD, fuente de alimentación 12 V 5,5 A MINI PAM -II/N
Temperatura de funcionamiento: -5 a +45 °C (sin condensación)
Dimensiones: 17,2 cm x 11,2 cm x 7,6 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 1,5 kg (baterías incluidas)
Fibra óptica MINI-PAM/FDiseño: Fibras de vidrio aleatorias de 70 μm que forman un solo haz protegido con plástico con extremos adaptadores de acero inoxidable
Dimensiones: diámetro activo 5,5 mm, diámetro exterior 8 mm, longitud 100 cm
Peso: 180 gramos
Fuente de alimentación MINI-PAM-II/NEntrada: 100 a 240 V CA, 50 a 60 Hz
Salida: 12 V CC, 5,5 A
Temperatura de funcionamiento: -5 a +45 °C (sin condensación)
Dimensiones: 13 cm x 5,5 cm x 3 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 350 g incluyendo cables
Cargador de batería 000190101101Entrada: 100 a 240 V CA, 50 a 60 Hz
Salida: 12 V CC, 1,0 A
Temperatura de funcionamiento: -5 a +45 °C (sin condensación)
Dimensiones: 17,5 cm x 10,5 cm x 3 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 300 g con cable incluido
Clip distanciador 60° 2010-ADiseño: Clip metálico con soporte para fibra y orificio para muestra de 11 mm: 5,5 cm x 1,4 cm (largo x ancho)
Artículos complementariosRejilla inclinada de plexiglás para un funcionamiento cómodo en el escritorio. Lápiz óptico para pantalla táctil. Correa de transporte para unidad optoelectrónica
Maleta de transporte MINI-PAM-II/TDiseño: Caja de aluminio con embalaje de espuma personalizado.
Dimensiones: 50 cm x 34 cm x 20 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 3,8 kilogramos
SoftwareWinControl-3Programa: Programa de Adquisición de Datos y Control del Sistema WinControl-3 (Microsoft Windows 10 y 11) para operación del sistema de medición vía PC, adquisición y análisis de datos. No compatible con Windows 10 en ARM.
Análisis de pulso de saturación: Medido: Ft, F(0) , F(M) , F, F(0) ' (también calculado), F(M) '. PAR, temperatura de la hoja y humedad relativa utilizando el soporte de clip para hojas 2035-B. Calculado: F(0) ' (también medido), F(V) /F(M) e Y(II) (rendimiento fotoquímico máximo y efectivo de PS II, respectivamente), q(L) , q(P) , q(N) , NPQ, Y(NPQ), Y (NO) y ETR (tasa de transporte de electrones).
Rutinas de ajuste: Dos rutinas para la determinación de los puntos cardinales α, I(k) y ETR(max) de curvas de luz.
Funciones programadas: Determinación automática del desplazamiento de la señal para todas las intensidades de luz y todos los niveles de ganancia. Calibración automática del sensor PAR interno frente a un sensor PAR externo conectado al MINI-PAM-II.
Protocolo de comunicación: USB.
Requisitos de la computadora: Procesador, 0,8 GHz. RAM, 512 MB. Resolución de pantalla, 1024 x 600 píxeles. Interfaz, USB 2.0/3.0.

Especificaciones para MINI-PAM-II - Configuración estándar de accesorios

Espectrómetro Miniatura MINI-SPEC/MPDiseño: tubo POM, en un lado, puerto para detección de luz, puerto para excitación de fluorescencia por LED azules (452 ​​nm máx) o verdes (525 nm máx), y puerto para luz blanca de una lámpara de tungsteno para mediciones de reflexión; en el lado opuesto, toma subacuática de 4 polos. Incluye cable de conexión de 160 cm de longitud y 100 g de peso con enchufe subacuático de 4 polos y enchufe hembra de 4 polos que se conecta a los puertos para LEAF CLIP o AUX del MINI-PAM-II
Módulo espectrómetro: microespectrómetro Hamamatsu, rango espectral de 400 a 800 nm, resolución espectral de 8 a 10 nm. PAR máximo: 4000 µmol m 
-2 s 
-1 para iluminación con características espectrales similares a la luz solar
Óptica de Entrada Plana SPEC/P: Varilla de aluminio anodizado duro de 10 mm de diámetro y 50 mm de longitud con guía de luz interna, en un extremo con entrada de luz lateral a través de un difusor de 5 mm de diámetro y el extremo opuesto insertado en una placa de montaje (diámetro 33 mm, altura 5 mm)
Óptica de Fluorescencia y Reflexión SPEC/R: Tapa de espectrómetro compuesta por POM: diámetro máximo 35 mm, altura 13 mm, peso 16 g. Con ranura central de 5 mm x 16 mm que aloja guías de luz de metacrilato para luz azul y verde para excitación de fluorescencia y para luz blanca para mediciones de reflexión. Con orificio central perforado de 3 mm de diámetro como canal de luz hacia la ventana del detector del espectrómetro. Incluye tapa de muestra para fijar la muestra (diámetro máximo 40 mm, altura 10 mm, peso 8 g) y estándar de reflectancia de Zenith Polymer de 10 mm de espesor. El espectrómetro y las tapas de muestra están acolchados con gomaespuma; ambas partes tienen imanes incorporados para atraerse entre sí y, por lo tanto, sujetar la muestra.
Dimensiones: 3,25 cm de diámetro, 17,5 cm de longitud máx.
Peso: 135 gramos
Soporte de clip para hojas 2035-BDiseño: Consta de un puerto para insertar la Fibra Óptica MINI-PAM/F y un clip para sujetar la muestra. Un orificio circular de 1 cm de diámetro en la parte superior del clip define el área de medición. La distancia estándar entre la punta de la fibra óptica y el área de medición es de 8 mm. El puerto alinea la fibra óptica en un ángulo de 60° con respecto al plano de medición. Se coloca un mini sensor cuántico en el nivel de la muestra mediante un brazo móvil de Perspex, se monta un sensor de temperatura de la hoja debajo de la muestra dentro de un tubo de plexiglás móvil hacia arriba y hacia abajo, y se monta un sensor de humedad a 3 cm de distancia de la muestra. La electrónica de la unidad 2035-B almacena factores de calibración de sensores. Los pulsos de saturación se pueden activar mediante un botón de disparo remoto. Se proporciona una toma de entrada para un sensor de luz adicional.
Mini sensor cuántico: Sensor para medición PAR selectiva con las propiedades espectrales del sensor LS-C, rango de 0 a 7000 μmol m 
-2 s 
-1 , corregido por coseno para luz incidente en ángulos entre -30° y +30° desde la superficie normal
Termopar: Ni-CrNi, diámetro del cable 0,1 mm, -20 a +60 °C
Sensor de humedad: circuito integrado de detección de humedad y temperatura, 0 - 100% de humedad relativa
Alimentación: Toma de clip de hoja MINI-PAM-II (5 V/10 mA)
Longitud del cable: 110 cm
Dimensiones: 17 cm x 5,7 cm (máx.) x 8 cm (máx.) (largo x ancho x alto)
Peso: 250 g (sin cable)
Soporte de Fibra Óptica para Superficies 2060-APlaca de aluminio (6,0 x 3,3 cm máx.) con orificio circular de 11 mm de diámetro (área de medición) y puerto de aluminio para colocar la fibra en un ángulo de 60° con respecto a la placa de aluminio. Con puerto para sensor de temperatura de la unidad 2065-M para medir temperatura superficial y rosca para montar el sensor PAR de la unidad 2065-M. Conectado a una varilla de acero de 10 x 0,8 cm (L x Ø) con dos soportes laterales de plástico (12 cm x 1 cm x 1 cm, L x W x H) que se pueden bloquear mediante tornillos moleteados.
Dimensiones (sin soportes de plástico): 15 cm x 3,3 cm x 2,5 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 125 gramos
Fuente de luz LED externa 2054-LDiseño: Fuente de luz actínica acoplable al soporte de clip para hojas 2035-B mediante varillas de fijación. La luz es emitida por una matriz de LED circular de 3,3 cm de diámetro que contiene 4 LED RGBW. La distancia entre el conjunto de LED y el nivel de muestra es de 3,5 cm cuando el 2054-L está montado en el clip de hoja 2035-B.
Características de emisión: pico a 452 nm, 520 nm y 630 nm de emisión de luz azul, verde y roja, respectivamente. La luz blanca consta de emisiones de 450 nm a 680 nm. El PAR máximo es 1500 µmol m 
-2 s 
-1 para cada canal (R, G, B o W). La composición de colores se puede ajustar libremente. La fuente de luz está conectada al puerto SYNC del fluorómetro MINI-PAM-II
Dimensiones (Lámpara y varillas de fijación): 9 cm (máx.) x 5 cm (máx.) x 11 cm (máx.) (Largo x Ancho x Alto)
Peso: 200 gramos
Clip de hoja de Arabidopsis 2060-BDiseño: Clip de aluminio con área de visualización de 3,2 mm de diámetro diseñado para colocar hojas pequeñas debajo de la fibra óptica del MINI-PAM-II, preparado para alojar sensores PAR y de temperatura del Mini Quantum/Temp.-Sensor 2065-M
Dimensiones: 7,6 cm x 3,0 cm (máx.) x 5,2 cm (máx.) (largo x ancho x alto)
Peso: 55 gramos
Kit de conversión 2035-B/RLC para clips de hojas 2030-B/2035-BDiseño: Conducto y barra de montaje, fabricados en Plexiglás, reemplazando el conducto de fibra óptica estándar de 60° del clip 2030-B (PAM-2500) o del clip 2035-B (MINI-PAM-II). El conducto posiciona la fibra óptica 2010-F (clip 2030-B) o la fibra óptica MINI-PAM/F (clip 2035-B) perpendicularmente a la superficie de la muestra. Con tornillo de fijación lateral. Incluye dos elementos circulares de protección contra la luz hechos de caucho celular y una placa base de plástico negro de 3 cm x 2 cm (largo x ancho) con borde de caucho celular.
Dimensiones máximas: 7 cm x 2,6 cm x 2,7 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 12 gramos
Mini sensor cuántico/temperatura 2065-MMini sensores cuánticos y de temperatura conectados mediante cables de 30 cm a una unidad electrónica para amplificación de señal, digitalización y almacenamiento de factores de calibración. A la unidad electrónica se le puede atornillar lateralmente una varilla de acero de 10 cm. Un cable de 110 cm conecta la unidad 2065-M con el fluorómetro
Mini sensor cuántico: sensor LS-C para medición PAR selectiva, rango de 0 a 7000 μmol m 
-2 s 
-1 , coseno corregido para luz incidente en ángulos entre -30° y +30° desde la superficie normal
Termopar: Ni-CrNi, diámetro del cable 0,1 mm, -20 a +60 °C
Dimensiones de la unidad electrónica: 15 cm x 3,3 cm x 2,5 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 125 g (sin cable)
Adaptador de Fibra Óptica 90° 2030-B90Accesorio para soporte de clip para hojas 2035 B. Coloca la fibra óptica MINI-PAM-II en un ángulo de 90° con respecto a la superficie de la hoja.
Cubeta de suspensión KS-2500Cubeta: Cubeta redonda de acero inoxidable (7,5 mm de ancho, 9,0 mm de profundidad) con adaptador de ventana superior para conectar la fibra óptica del MINI-PAM-II; Incrustado en cuerpo de PVC con puerto de inyección para jeringas Hamilton y boquillas de manguera para conectar un baño de agua de flujo externo (no incluido). Incluye tres barras agitadoras magnéticas de 6,0 x 1,5 mm.
Clip de hoja oscura DLC-8Ejecución: Clip de aluminio con superficies de contacto de fieltro y persiana corredera
Dimensiones: 6,5 cm x 2 cm (máx.) x 1,5 cm (máx.) (largo x ancho x alto)
Peso: 3,6 gramos
Agitador magnético con soporte de fibra óptica MKS-2500Agitador magnético: Para impulsar la pulga magnética en la cubeta de suspensión KS-2500; con anillo de PVC para centrar la cubeta y soporte miniatura para fijar la fibra óptica encima de la cubeta
Fibra óptica en miniatura MINI-PAM/F1Diámetro activo 2 mm, longitud 1,5 m. Incluye adaptador para fijación al soporte de clip para hojas 2035-B, al clip para hojas de Arabidopsis 2060-B y al soporte de fibra óptica para superficies 2060-A
Escáner de código de barras BCS-9590Diseño: Escáner láser portátil de una sola línea con botón disparador y cable parcialmente enrollado de 1 m; para ser conectado al Analizador de Rendimiento de Fotosíntesis MINI-PAM-II. Los códigos de barras se almacenan junto con los datos de fluorescencia.
Dimensiones: 9 cm (máx.) x 6 cm (máx.) x 16 cm (máx.) (largo x ancho x alto)
Peso: 335 gramos
Trípode compacto ST-2101APara montar el soporte de clip para hojas 2035-B, el mini sensor cuántico/temperatura 2065-M o el clip para hojas de Arabidopsis 2060-B

Especificaciones para la configuración del porómetro de accesorios MINI-PAM-II

MINI-PAM-II/PORÓMETRODiseño: cámara foliar con área de muestra circular de 1 cm de diámetro. Ventilado por un lado por aire con caudal regulable. La cantidad de vapor de agua liberado al flujo de aire se determina con sensores de humedad de alta precisión. La temperatura de las hojas se mide mediante un sensor de infrarrojos situado en el fondo de la cámara. La información del GPS es rastreada por un receptor GPS incorporado. Se coloca un mini sensor cuántico en el plano de muestra. Los valores 
ambientales de CO(2) son monitoreados por un sensor de CO(2) orientado hacia el exterior, en el lado inferior izquierdo del porómetro. Para mediciones de fluorescencia de clorofila a, un puerto de fibra óptica alinea la fibra óptica MINI-PAM/F en un ángulo de 60° con respecto al plano de medición. Incluye soporte para trípode.
Fuente de alimentación: toma de clip de hoja MINI-PAM-II; El MINI-PAM-II: las 6 pilas recargables AA (Mignon) (Eneloop 1,2 V/2 Ah) proporcionan energía durante más de 6 horas para experimentos típicos. El porómetro por sí solo puede funcionar durante más de 9 horas con el caudal máximo. Es posible cambiar fácilmente la batería.
Área de muestra: 1 cm de diámetro
Caudales: 40; 60; 80; 100; 120; 140; 160; 180 o 200 µmol s(-1)
Precisión del sensor de humedad relativa: típ. 20-70 % HR ±1,0 % HR; <20 %HR y >70 %RH ±1,5 %RH; ΔT = ±0,1 °C
Precisión del sensor de presión: ± 0,1 kPa, ruido 0,2 Pa
Temperatura de la hoja. Precisión del sensor: ± 0,3 °C, emisividad ajustable 0,1-1,0.
Precisión del sensor de CO 
2 ambiental
 : ± (30 ppm, + 3 % de la lectura)
Precisión del caudalímetro: ± (1,5 % RD + 0,15 % FS)
Precisión del receptor GPS: 2,0 m CEP (probable error circular)
Sensor microcuántico: Sensor para medición PAR selectiva con las propiedades espectrales del sensor LS-C, rango de 0 a 7000 µmol m(-2) s(-1) , coseno corregido para la luz incidente en un ángulo entre -30° y +30° desde la superficie preamplificador interno normal
Parámetro: gs mmol m(-2) s(-1) ; gt mmol m(-2) s(-1) ; GB mmol m(-2) s(-1) ; H2O en mmol mol(-1) ;dH2O mmol mol(-1) ; H2O salida mmol mol(-1) ; presión de la cámara kPa, temperatura (hoja) °C; Flujo de entrada/salida µmol s(-1) ; DPV Pa/kPa ;Em mmol m(-2) s(-1) ; PAR µmol m(-2) s(-1) ; Ubicación GPS; Orientación GPS; inclinación del sol
Condiciones de funcionamiento: -5 a +45 °C; 0-90 %RH (sin condensación); 30-110kPa
Longitud del cable: 75 cm
Dimensiones: 24 cm x 7,5 cm x 14 cm (largo x ancho x alto máximo)
Peso: 450 g (sin cable)
Maleta de transporte PORO/TDiseño: Estuche negro con embalaje de espuma personalizado
Dimensiones: 31 cm x 26,5 cm x 11 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 1,2 kilogramos

Especificaciones para MINI-PAM-II - Accesorios O₂ + Configuración de fluorescencia

FireStingO₂ (1 canal) FSO2-1Diseño: Medidor de oxígeno en configuración de un canal más optodo tipo aguja ópticamente aislado. Rango de medición óptimo, 0-50% O(2) . Rango máximo de medición, 0-100% O(2) . Límite de detección, 0,02% O(2) . Principio de medición, detección permanente de luminiscencia mediante fibra óptica. Longitud de onda de excitación, 620 nm. Longitud de onda de emisión, 760 nm. Velocidad máxima de muestreo: 20 muestras por segundo sin compensación de temperatura. Puerto de extensión, interfaz serie. Salida analógica: 0-2,5 V.
Temperatura de funcionamiento: 0 a +50 °C (condiciones sin condensación)
Dimensiones: 6,8 cm x 12 cm x 3 cm (largo x ancho x alto)
Peso: 350 gramos
Convertidor de interfaz para FireStingO₂ FSO₂-AKDiseño: Medidor de oxígeno en configuración de un canal más optodo tipo aguja ópticamente aislado. Las especificaciones detalladas se encuentran en el manual FireStingO2 de 
PyroScience . Incluye adaptador para montar el sensor de oxígeno en la cubeta de suspensión KS-2500, incluida la placa de metacrilato acoplable a FSO2-1 con soporte para conector de interfaz
Dimensiones Caja de interfaz, 5,5 cm x 3 cm x 2 cm (largo x ancho x alto). Longitud del cable de interfaz, 40 cm. Adaptador para sensor de oxígeno, tubo con 2,5 cm máx. diámetro, 5 cm (largo). Placa de metacrilato, 15 cm x 11 (máx.) cm x 3 cm (máx.) (largo x ancho x alto)
Peso: Caja de interfaz y cable, 55 g. Adaptador para sensor de oxígeno, 20 g. Placa de metacrilato, 65 g
Cubeta de suspensión KS-2500Para especificaciones, consulte 
Configuración estándar.
Agitador magnético con soporte de fibra óptica MKS-2500Para especificaciones, consulte 
Configuración estándar.

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