Asesoria

Descripción

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Medidor de Fotosíntesis y Clorofila Junior-Pam entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia

Fluorometría

La fluorometría de clorofila con modulación de amplitud de pulso (PAM) en combinación con el análisis de pulso de saturación de extinción de la fluorescencia es ahora una técnica estándar para evaluar la fotosíntesis de las plantas.

En la década de 1990, el fluorómetro Walz Teaching-PAM (PAM-200) llevó la fluorometría PAM a las aulas universitarias. Desde entonces, ha habido avances considerables en la tecnología LED y PC, lo que ha permitido el desarrollo de un fluorómetro didáctico potente, versátil y al mismo tiempo compacto: el JUNIOR-PAM.

Aplicaciones:

  • Estudios fisiológicos de plantas: La fluorometría de clorofila se utiliza para estudiar la respuesta de las plantas a diferentes condiciones ambientales, como la luz, la temperatura, la disponibilidad de agua y nutrientes, así como el estrés abiótico y biótico.
  • Evaluación del estrés vegetal: Permite detectar y cuantificar el estrés en las plantas antes de que los síntomas sean visibles, lo que facilita la adopción de medidas preventivas.
  • Control de calidad de cultivos agrícolas: La medición de la fluorescencia de la clorofila se utiliza para evaluar la salud y el rendimiento de los cultivos, así como para optimizar las prácticas de cultivo.
  • Investigación en biología vegetal y ecología: Se emplea para estudiar la fisiología de las plantas, la interacción planta-microorganismo, la dinámica de la vegetación y la respuesta de los ecosistemas a los cambios ambientales.
  • Monitorización ambiental: La fluorometría de clorofila se utiliza en estudios de calidad del agua, evaluación de la salud de los ecosistemas acuáticos y detección de la contaminación por nutrientes y productos químicos.

Beneficios:

  • No destructiva: Permite realizar mediciones repetidas en el mismo individuo vegetal sin dañarlo.
  • Sensibilidad: La fluorescencia de la clorofila es una medida sensible de la eficiencia fotosintética y el estado fisiológico de las plantas.
  • Rapidez y facilidad de uso: La fluorometría de clorofila es una técnica relativamente rápida y sencilla que proporciona resultados cuantitativos.
  • Información en tiempo real: Permite realizar mediciones en el campo, proporcionando información instantánea sobre la salud de las plantas y los ecosistemas.

Propiedades destacadas del JUNIOR-PAM

  • Optimizado para la enseñanza en el aula por su pequeño tamaño y facilidad de operación.
  • Controlado y alimentado por PC mediante línea USB.
  • Software WinControl-3 para experimentos básicos y avanzados.
  • Descuento por cantidad para equipos de prácticas

Características Generales JUNIOR-PAM

  • El fluorómetro JUNIOR-PAM es un instrumento miniaturizado capaz de realizar todo el espectro de análisis de pulsos de saturación del fotosistema II. Una pequeña caja de 11,5 x 6,5 x 3,0 cm contiene todos los componentes ópticos y electrónicos. El fluorómetro se conecta a la muestra mediante una única fibra plástica de 50 cm de largo y 1,5 mm de diámetro.
  • El JUNIOR-PAM emplea un LED de potencia azul (Versión JUNIOR-PAM) o un LED de potencia blanco (Versión JUNIOR-PAM/W) para luz de excitación modulada por pulsos, iluminación actínica y pulsos de saturación. El fluorómetro tiene un LED de color rojo lejano para la excitación selectiva de PS I, que es necesario para determinar el nivel de fluorescencia de F 0 '.
  • Se proporcionan dos tipos diferentes de clips para hojas. Las mediciones con luz ambiental se realizan con un clip de hoja de 60°. Se proporciona un clip de hoja magnético para la aclimatación a la oscuridad y luego se mide el rendimiento fotoquímico máximo del fotosistema II (F V /F M ).
  • Un clip de monitoreo de hojas opcional está disponible para medir la intensidad de la luz ambiental (PAR, μmol m -2 s -1 ) al nivel de la hoja y la temperatura de la hoja.

Versión Azul y Blanco JUNIOR-PAM y JUNIOR-PAM/W

Las dos versiones del fluorómetro JUNIOR-PAM proporcionan luz visible de diferente composición espectral: la versión AZUL emite entre 400 y 500 nm con un máximo en torno a 445 nm. La versión BLANCA muestra una emisión azul de banda estrecha que alcanza un máximo de alrededor de 445 nm más una emisión de banda ancha que oscila entre 475 y 650 nm (Fig. 1).

Ambas versiones están equipadas con un LED de color rojo lejano con una emisión máxima de alrededor de 745 nm y un rango de emisión de 675 a 800 nm.

Además, la ventana espectral para la detección de fluorescencia distingue las dos versiones. La versión AZUL detecta fluorescencia en longitudes de onda > 630 nm y la versión BLANCA en longitudes de onda > 650 nm (Fig. 2).

La versión AZUL es el tipo estándar de JUNIOR-PAM y es adecuada para mediciones de fluorescencia con la mayoría de las algas eucariotas y plantas superiores. Para las algas que absorben mal en azul, como puede ser el caso de especies del filo cianobacterias, la versión BLANCA produce señales de fluorescencia significativamente mejores que la versión AZUL.

JUNIOR-PAM-1-KASALAB-COLOMBIA.pngFigura 1: Espectros de emisión típicos de los LED JUNIOR-PAM normalizados al máximo. Línea azul, LED azul de JUNIOR-PAM. Línea gris, LED blanco de JUNIOR-PAM/W. Línea roja oscura, LED rojo lejano de JUNIOR-PAM y JUNIOR-PAM/W. Para cada pico, el ancho máximo y total a la mitad del máximo (FWHM, entre paréntesis) se indica en nm
JUNIOR-PAM-2-KASALAB-COLOMBIA.pngFigura 2: Espectros de transmitancia de filtros rojos colocados frente al detector de fluorescencia. Curva roja, JUNIOR-PAM. Curva rojo oscuro, JUNIOR-PAM/W.

Aplicaciones para el Medidor de Clorofila y Fotosíntesis JUNIOR-PAM y JUNIOR-PAM/W

Sin necesidad de preparaciones complicadas, el JUNIOR-PAM puede realizar experimentos de fluorescencia sobre la función de la fotosíntesis. Aquí se presentan dos pruebas clásicas: una curva de inducción de fluorescencia con una hoja y la formación de fluorescencia variable después de humedecer un talo de liquen.

JUNIOR-PAM-3-KASALAB-COLOMBIA.pngFigura 1: Curva de inducción de fluorescencia. Se sondeó 
una hoja de Prunus 
laurocerasus mantenida en la oscuridad durante 15 minutos. F 
V /FM 
se determinó a 1 min 40 s. La luz actínica se encendió de 3 min 40 s a 8 min (ver "PAR"). El Y(II) fue mínimo justo después de la aparición de la luz y aumentó durante la exposición adicional a medida que varias partes de la maquinaria fotosintética se activaban con la luz. El software WinControl-3 realizó análisis de pulso de saturación automáticamente. En negro se muestran la fluorescencia máxima (F 
M '), la fluorescencia mínima (F 
0 ') y la fluorescencia registrada continuamente (F (t)).
JUNIOR-PAM-4-KASALAB-COLOMBIA.png
Figura 2: Regeneración de fluorescencia variable en un liquen talo durante una transición de seco a húmedo. Se agregaron unas gotas de agua a la muestra completamente seca (consulte “Agua agregada”). La fluorescencia medida continua (F(t)), la fluorescencia máxima (F 
M ') y el rendimiento del fotosistema II (Y(II)) aumentaron inmediatamente después de la humectación, lo que indica que se liberó la extinción de la fluorescencia en estado seco y el centro de reacción del fotosistema II comenzó a funcionar. trabaja de nuevo. La función de reloj del software WinControl-3 realizó automáticamente el análisis del pulso de saturación. Un fenómeno similar se observa con los musgos poiquilohídricos.

Software WinControl-3

Características generales e interfaz gráfica de usuario

Además del JUNIOR-PAM, el software WinControl-3 opera los fluorómetros MICRO-PAM , MONITORING-PAM , DIVING-PAM-II, MINI-PAM-II y WATER-PAM-II , instrumentos operados por PAM-CONTROL ( MICROSCOPÍA- PAM , Versión MICROFIBRA-PAM y AGUA-PAM FIBRA ) así como el Fotómetro Universal ULM-500 .

JUNIOR-PAM-5-KASALAB-COLOMBIA.pngVentana de curva de inducción: la ventana muestra fluorescencia PAM continua (Ft) como una línea negra. El parámetro de extinción no fotoquímico, NPQ, está dibujado en azul y la tasa de transporte de electrones (ETR) se muestra en rojo.
JUNIOR-PAM-6-KASALAB-COLOMBIA.png
Ventana de curva de luz:
 los datos de fluorescencia se trazan frente a PAR. Los puntos rojos representan datos ETR a los que WinControl-3 ajustó el modelo de curva de luz "REG1" (curva roja oscura). Usando color verde, el panel muestra tres tipos de rendimientos cuánticos del fotosistema II: el rendimiento para la fotoquímica (Y(II), en fuerte disminución), para la disipación de calor incontrolada (Y(NO), en disminución gradual) y el rendimiento para la disipación de calor controlada. (Y(NPQ), creciente)
JUNIOR-PAM-7-KASALAB-COLOMBIA.pngVentana de informe: La ventana enumera para cada análisis de pulso de saturación la fecha, la hora, los niveles de fluorescencia, F y Fm', PAR, Y(II) y ETR. Las líneas 6 a 18 son datos de una curva de respuesta a la luz. Los valores cardinales de esta curva están resaltados.
JUNIOR-PAM-8-KASALAB-COLOMBIA.png
Ventana de archivos por lotes:
 los archivos por lotes ejecutan experimentos automáticamente. Cree archivos por lotes utilizando los comandos proporcionados por los menús desplegables (el comando actual es "Encender la luz actínica". Para escribir en el archivo por lotes, haga clic sucesivamente en: Editar > Agregar comando > Fuentes de luz > Luz actínica encendida). También cree archivos por lotes utilizando la grabadora de macros de WinControl-3.

Evaluación de datos

Análisis de pulso de saturación con detección automática y cálculo de parámetros de fluorescencia estándar: F 0 , F M , F 0 ' (medido o calculado), F M ', F, F V /F M , q P , q L , q N , NPQ , Y(II), Y(NPQ), Y(NO), ETR.

Exportación de datos

Exporte en formato CSV o TXT las trazas de fluorescencia originales, los datos de análisis de pulsos de saturación y las estimaciones de parámetros de las curvas de respuesta a la luz.

Rutinas automatizadas

Activación repetitiva de muchas funciones del fluorómetro (p. ej., análisis de pulso de saturación, curvas de inducción). Ejecución automática de curvas de luz e inducción, corrección de offset y calibración del sensor de luz interno.

Protocolos de medición definidos por el cliente

Ejecución de procedimientos experimentales personalizados mediante archivos por lotes.

Monitoreo de Clip de Hoja JUNIOR-BD

El clip de hojas JUNIOR-BD agrega mediciones de radiación fotosintéticamente activa, PAR, en μmol m -2 s -1 y temperatura de la hoja como información complementaria a los datos de fluorescencia. La PAR se mide mediante un microsensor cuántico montado paralelo a la muestra, y la temperatura se registra mediante un termopar de Ni-CrNi que toca la superficie inferior de la hoja.

En comparación con su predecesor (JUNIOR-B), el clip JUNIOR-BD proporciona funciones digitales avanzadas: el clip convierte las señales primarias de temperatura y PAR en información digital y, por lo tanto, transfiere señales sin pérdidas al JUNIOR-PAM. Además, los datos de calibración de ambos sensores del clip se almacenan en la memoria flash del clip y son utilizados automáticamente por el JUNIOR-PAM conectado.

El clip JUNIOR-BD solo es compatible con los tipos más nuevos de fluorómetros JUNIOR-PAM. El clip de hoja anterior, sin embargo, todavía está disponible. Cuando vuelva a pedir un clip de hoja, proporcione el número de serie de su JUNIOR-PAM para que podamos seleccionar el accesorio adecuado para usted

Guía de luz extralarga

La guía de luz de 100 cm de longitud es adecuada para investigaciones de muestras de difícil acceso y para muestras sumergidas.

Especificaciones Técnicas

Unidad Optoelectrónica JUNIOR-PAM (Versión AZUL)

Excitación de fluorescencia moduladaLED azul (longitud de onda de máxima emisión: 445 nm). Frecuencias de modulación de 5 a 25 Hz ajustables en incrementos de 5 Hz y 100 Hz. Se mide la fluorescencia en longitudes de onda superiores a 630 nm.
Luz actínica Mismo LED que se utiliza para la luz modulada. PAR actínico, 25 a 1500 μmol μmol m-2 s-1 ; PAR máximo de pulsos de saturación, 7000 μmol m-2 s-1 . Todos los datos son válidos para una distancia de 1 mm desde la punta de la guía de luz JUNIOR-PAM de 50 cm.

Unidad Optoelectrónica JUNIOR-PAM/W (Versión BLANCA)

Excitación de fluorescencia moduladaLED blanco (longitudes de onda de máxima emisión: 445 y 545 nm). Frecuencias de modulación de 5 a 25 Hz ajustables en incrementos de 5 Hz y 100 Hz. Se mide la fluorescencia en longitudes de onda superiores a 650 nm.

Luz actínicaMismo LED que se utiliza para la luz modulada. PAR a 1 mm de distancia de la punta de la guía de luz JUNIOR-PAM de 50 cm: entre 25 y 1500 μmol m-2 s-1 . PAR máximo de pulsos de saturación, 7000 µmol m-2 s-1

Unidad optoelectrónica JUNIOR-PAM y JUNIOR-PAM/W

CarcasaCarcasa de aluminio con conector USB tipo B, conector M8 de 4 polos para conectar el clip de hoja de monitoreo JUNIOR-PAM (accesorio), puerto para guía de luz JUNIOR-PAM y soporte de muestra giratorio
Luz roja lejanaLED con longitud de onda de emisión máxima de 745 nm para la excitación selectiva del fotosistema I
Detección de fluorescenciaFotodiodo PIN protegido por filtro de paso largo. Amplificador de ventana selectiva para medir la fluorescencia modulada por amplitud de pulso (PAM)
ComunicaciónComunicación USB estándar mediante cable USB de 1,2 m tipo AB
Fuente de alimentación5 V CC suministrada por el cable USB tipo AB utilizado para la comunicación
Consumo de energía100 mW en funcionamiento normal y 500 mW durante el pulso de saturación
Dimensiones11,5 cm x 6,5 cm x 3 cm (largo x ancho x alto)
Peso200 gramos
Temperatura de funcionamiento0 a + 40 °C
Rango de humedad de funcionamiento35 a 85% RH (para evitar la condensación)

SoftwareWinControl-3

ProgramaPrograma de Adquisición de Datos y Control del Sistema WinControl-3 (Microsoft Windows 10 y 11) para operación del sistema de medición vía PC, adquisición y análisis de datos. No compatible con Windows 10 en ARM
Análisis de pulso de saturación Medido: F t , F 0 , F M , F, F 0 ' (también calculado), F M '. PAR y temperatura de la hoja cuando se conecta el Monitor Leaf-Clip JUNIOR-BD. Calculado: F 0 ' (también medido), F V /F M e Y(II) (rendimiento fotoquímico máximo y efectivo de PS II, respectivamente), q L , q P , q N , NPQ, Y(NPQ), Y (NO) y ETR (tasa de transporte de electrones)
Rutinas de ajusteDos rutinas para la determinación de los puntos cardinales α, Ik y ETRmax de curvas de luz
ProgramabilidadTotalmente programable usando lenguaje de archivos por lotes
Requisitos del ordenador1 toma USB libre. Procesador, 1GHz. RAM, 512 MB. Resolución de pantalla, 1024 x 600 píxeles. Interfaz, USB 2.0/3.0

Artículos varios incluidos

Guía de luzfibra plástica de 50 cm x 1,5 mm (largo x diámetro)
Clips de muestraclip de hoja abierta (ángulo entre la radiación incidente de JUNIOR-PAM y la superficie de la hoja, 60°) y clip de hoja magnético (ángulo entre la radiación incidente de JUNIOR-PAM y la superficie de la hoja, 90°)
Estándar de fluorescencialámina de fluorescencia de 3 cm x 2 cm
Juego de pulidoJuego para puntas de fibra que incluye varios discos de pulido
Cable USB cable USB AB
Software 
en memoria USB
incluido el último software WinControl-3
Maleta de Transporte JUNIOR-TCaja de plástico gris con asa. Interior: acolchado de espuma enrollada. Dimensiones: 29 cm x 25 cm x 6 cm (largo x ancho x alto). Peso: 510 gramos

Monitoreo de Clip de Hoja JUNIOR-BD

Sensor micro-cuánticoMedición selectiva de PAR, 0 a 2500 μmol m-2 s-1 PAR
TermoparNi-CrNi, -20 a +60 °C
Temperatura de la hoja-20 a +60 °C
Fuente de alimentaciónToma especial JUNIOR-PAM
Longitud del cable100 cm
Dimensiones13 cm x 2,5 cm (máx.) x 5,5 cm (máx.) (largo x ancho x alto)
Peso162 g (cable incluido)

Guía de luz extralarga

  • Fibra plástica de 100 cm x 1,5 mm (largo x diámetro) para muestras de difícil acceso o mediciones bajo el agua

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