Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Medidor de Fotosíntesis y Clorofila Junior-Pam entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia
La fluorometría de clorofila con modulación de amplitud de pulso (PAM) en combinación con el análisis de pulso de saturación de extinción de la fluorescencia es ahora una técnica estándar para evaluar la fotosíntesis de las plantas.
En la década de 1990, el fluorómetro Walz Teaching-PAM (PAM-200) llevó la fluorometría PAM a las aulas universitarias. Desde entonces, ha habido avances considerables en la tecnología LED y PC, lo que ha permitido el desarrollo de un fluorómetro didáctico potente, versátil y al mismo tiempo compacto: el JUNIOR-PAM.
Las dos versiones del fluorómetro JUNIOR-PAM proporcionan luz visible de diferente composición espectral: la versión AZUL emite entre 400 y 500 nm con un máximo en torno a 445 nm. La versión BLANCA muestra una emisión azul de banda estrecha que alcanza un máximo de alrededor de 445 nm más una emisión de banda ancha que oscila entre 475 y 650 nm (Fig. 1).
Ambas versiones están equipadas con un LED de color rojo lejano con una emisión máxima de alrededor de 745 nm y un rango de emisión de 675 a 800 nm.
Además, la ventana espectral para la detección de fluorescencia distingue las dos versiones. La versión AZUL detecta fluorescencia en longitudes de onda > 630 nm y la versión BLANCA en longitudes de onda > 650 nm (Fig. 2).
La versión AZUL es el tipo estándar de JUNIOR-PAM y es adecuada para mediciones de fluorescencia con la mayoría de las algas eucariotas y plantas superiores. Para las algas que absorben mal en azul, como puede ser el caso de especies del filo cianobacterias, la versión BLANCA produce señales de fluorescencia significativamente mejores que la versión AZUL.
 | Figura 1: Espectros de emisión típicos de los LED JUNIOR-PAM normalizados al máximo. Línea azul, LED azul de JUNIOR-PAM. Línea gris, LED blanco de JUNIOR-PAM/W. Línea roja oscura, LED rojo lejano de JUNIOR-PAM y JUNIOR-PAM/W. Para cada pico, el ancho máximo y total a la mitad del máximo (FWHM, entre paréntesis) se indica en nm |
 | Figura 2: Espectros de transmitancia de filtros rojos colocados frente al detector de fluorescencia. Curva roja, JUNIOR-PAM. Curva rojo oscuro, JUNIOR-PAM/W. |
Sin necesidad de preparaciones complicadas, el JUNIOR-PAM puede realizar experimentos de fluorescencia sobre la función de la fotosíntesis. Aquí se presentan dos pruebas clásicas: una curva de inducción de fluorescencia con una hoja y la formación de fluorescencia variable después de humedecer un talo de liquen.
 | Figura 1: Curva de inducción de fluorescencia. Se sondeó una hoja de Prunus laurocerasus mantenida en la oscuridad durante 15 minutos. F V /FM se determinó a 1 min 40 s. La luz actínica se encendió de 3 min 40 s a 8 min (ver "PAR"). El Y(II) fue mínimo justo después de la aparición de la luz y aumentó durante la exposición adicional a medida que varias partes de la maquinaria fotosintética se activaban con la luz. El software WinControl-3 realizó análisis de pulso de saturación automáticamente. En negro se muestran la fluorescencia máxima (F M '), la fluorescencia mínima (F 0 ') y la fluorescencia registrada continuamente (F (t)). |
 | Figura 2: Regeneración de fluorescencia variable en un liquen talo durante una transición de seco a húmedo. Se agregaron unas gotas de agua a la muestra completamente seca (consulte “Agua agregada”). La fluorescencia medida continua (F(t)), la fluorescencia máxima (F M ') y el rendimiento del fotosistema II (Y(II)) aumentaron inmediatamente después de la humectación, lo que indica que se liberó la extinción de la fluorescencia en estado seco y el centro de reacción del fotosistema II comenzó a funcionar. trabaja de nuevo. La función de reloj del software WinControl-3 realizó automáticamente el análisis del pulso de saturación. Un fenómeno similar se observa con los musgos poiquilohídricos. |
Además del JUNIOR-PAM, el software WinControl-3 opera los fluorómetros MICRO-PAM , MONITORING-PAM , DIVING-PAM-II, MINI-PAM-II y WATER-PAM-II , instrumentos operados por PAM-CONTROL ( MICROSCOPÍA- PAM , Versión MICROFIBRA-PAM y AGUA-PAM FIBRA ) así como el Fotómetro Universal ULM-500 .
 | Ventana de curva de inducción: la ventana muestra fluorescencia PAM continua (Ft) como una línea negra. El parámetro de extinción no fotoquímico, NPQ, está dibujado en azul y la tasa de transporte de electrones (ETR) se muestra en rojo. |
 | Ventana de curva de luz: los datos de fluorescencia se trazan frente a PAR. Los puntos rojos representan datos ETR a los que WinControl-3 ajustó el modelo de curva de luz "REG1" (curva roja oscura). Usando color verde, el panel muestra tres tipos de rendimientos cuánticos del fotosistema II: el rendimiento para la fotoquímica (Y(II), en fuerte disminución), para la disipación de calor incontrolada (Y(NO), en disminución gradual) y el rendimiento para la disipación de calor controlada. (Y(NPQ), creciente) |
 | Ventana de informe: La ventana enumera para cada análisis de pulso de saturación la fecha, la hora, los niveles de fluorescencia, F y Fm', PAR, Y(II) y ETR. Las líneas 6 a 18 son datos de una curva de respuesta a la luz. Los valores cardinales de esta curva están resaltados. |
 | Ventana de archivos por lotes: los archivos por lotes ejecutan experimentos automáticamente. Cree archivos por lotes utilizando los comandos proporcionados por los menús desplegables (el comando actual es "Encender la luz actínica". Para escribir en el archivo por lotes, haga clic sucesivamente en: Editar > Agregar comando > Fuentes de luz > Luz actínica encendida). También cree archivos por lotes utilizando la grabadora de macros de WinControl-3. |
Análisis de pulso de saturación con detección automática y cálculo de parámetros de fluorescencia estándar: F 0 , F M , F 0 ' (medido o calculado), F M ', F, F V /F M , q P , q L , q N , NPQ , Y(II), Y(NPQ), Y(NO), ETR.
Exporte en formato CSV o TXT las trazas de fluorescencia originales, los datos de análisis de pulsos de saturación y las estimaciones de parámetros de las curvas de respuesta a la luz.
Activación repetitiva de muchas funciones del fluorómetro (p. ej., análisis de pulso de saturación, curvas de inducción). Ejecución automática de curvas de luz e inducción, corrección de offset y calibración del sensor de luz interno.
Ejecución de procedimientos experimentales personalizados mediante archivos por lotes.
El clip de hojas JUNIOR-BD agrega mediciones de radiación fotosintéticamente activa, PAR, en μmol m -2 s -1 y temperatura de la hoja como información complementaria a los datos de fluorescencia. La PAR se mide mediante un microsensor cuántico montado paralelo a la muestra, y la temperatura se registra mediante un termopar de Ni-CrNi que toca la superficie inferior de la hoja.
En comparación con su predecesor (JUNIOR-B), el clip JUNIOR-BD proporciona funciones digitales avanzadas: el clip convierte las señales primarias de temperatura y PAR en información digital y, por lo tanto, transfiere señales sin pérdidas al JUNIOR-PAM. Además, los datos de calibración de ambos sensores del clip se almacenan en la memoria flash del clip y son utilizados automáticamente por el JUNIOR-PAM conectado.
El clip JUNIOR-BD solo es compatible con los tipos más nuevos de fluorómetros JUNIOR-PAM. El clip de hoja anterior, sin embargo, todavía está disponible. Cuando vuelva a pedir un clip de hoja, proporcione el número de serie de su JUNIOR-PAM para que podamos seleccionar el accesorio adecuado para usted
La guía de luz de 100 cm de longitud es adecuada para investigaciones de muestras de difícil acceso y para muestras sumergidas.
| Excitación de fluorescencia modulada | LED azul (longitud de onda de máxima emisión: 445 nm). Frecuencias de modulación de 5 a 25 Hz ajustables en incrementos de 5 Hz y 100 Hz. Se mide la fluorescencia en longitudes de onda superiores a 630 nm. |
| Luz actínica | Mismo LED que se utiliza para la luz modulada. PAR actínico, 25 a 1500 μmol μmol m-2 s-1 ; PAR máximo de pulsos de saturación, 7000 μmol m-2 s-1 . Todos los datos son válidos para una distancia de 1 mm desde la punta de la guía de luz JUNIOR-PAM de 50 cm. |
| Excitación de fluorescencia modulada | LED blanco (longitudes de onda de máxima emisión: 445 y 545 nm). Frecuencias de modulación de 5 a 25 Hz ajustables en incrementos de 5 Hz y 100 Hz. Se mide la fluorescencia en longitudes de onda superiores a 650 nm. |
| Luz actínica | Mismo LED que se utiliza para la luz modulada. PAR a 1 mm de distancia de la punta de la guía de luz JUNIOR-PAM de 50 cm: entre 25 y 1500 μmol m-2 s-1 . PAR máximo de pulsos de saturación, 7000 µmol m-2 s-1 |
| Carcasa | Carcasa de aluminio con conector USB tipo B, conector M8 de 4 polos para conectar el clip de hoja de monitoreo JUNIOR-PAM (accesorio), puerto para guía de luz JUNIOR-PAM y soporte de muestra giratorio |
| Luz roja lejana | LED con longitud de onda de emisión máxima de 745 nm para la excitación selectiva del fotosistema I |
| Detección de fluorescencia | Fotodiodo PIN protegido por filtro de paso largo. Amplificador de ventana selectiva para medir la fluorescencia modulada por amplitud de pulso (PAM) |
| Comunicación | Comunicación USB estándar mediante cable USB de 1,2 m tipo AB |
| Fuente de alimentación | 5 V CC suministrada por el cable USB tipo AB utilizado para la comunicación |
| Consumo de energía | 100 mW en funcionamiento normal y 500 mW durante el pulso de saturación |
| Dimensiones | 11,5 cm x 6,5 cm x 3 cm (largo x ancho x alto) |
| Peso | 200 gramos |
| Temperatura de funcionamiento | 0 a + 40 °C |
| Rango de humedad de funcionamiento | 35 a 85% RH (para evitar la condensación) |
| Programa | Programa de Adquisición de Datos y Control del Sistema WinControl-3 (Microsoft Windows 10 y 11) para operación del sistema de medición vía PC, adquisición y análisis de datos. No compatible con Windows 10 en ARM |
| Análisis de pulso de saturación | Medido: F t , F 0 , F M , F, F 0 ' (también calculado), F M '. PAR y temperatura de la hoja cuando se conecta el Monitor Leaf-Clip JUNIOR-BD. Calculado: F 0 ' (también medido), F V /F M e Y(II) (rendimiento fotoquímico máximo y efectivo de PS II, respectivamente), q L , q P , q N , NPQ, Y(NPQ), Y (NO) y ETR (tasa de transporte de electrones) |
| Rutinas de ajuste | Dos rutinas para la determinación de los puntos cardinales α, Ik y ETRmax de curvas de luz |
| Programabilidad | Totalmente programable usando lenguaje de archivos por lotes |
| Requisitos del ordenador | 1 toma USB libre. Procesador, 1GHz. RAM, 512 MB. Resolución de pantalla, 1024 x 600 píxeles. Interfaz, USB 2.0/3.0 |
| Guía de luz | fibra plástica de 50 cm x 1,5 mm (largo x diámetro) |
| Clips de muestra | clip de hoja abierta (ángulo entre la radiación incidente de JUNIOR-PAM y la superficie de la hoja, 60°) y clip de hoja magnético (ángulo entre la radiación incidente de JUNIOR-PAM y la superficie de la hoja, 90°) |
| Estándar de fluorescencia | lámina de fluorescencia de 3 cm x 2 cm |
| Juego de pulido | Juego para puntas de fibra que incluye varios discos de pulido |
| Cable USB | cable USB AB |
| Software en memoria USB | incluido el último software WinControl-3 |
| Maleta de Transporte JUNIOR-T | Caja de plástico gris con asa. Interior: acolchado de espuma enrollada. Dimensiones: 29 cm x 25 cm x 6 cm (largo x ancho x alto). Peso: 510 gramos |
| Sensor micro-cuántico | Medición selectiva de PAR, 0 a 2500 μmol m-2 s-1 PAR |
| Termopar | Ni-CrNi, -20 a +60 °C |
| Temperatura de la hoja | -20 a +60 °C |
| Fuente de alimentación | Toma especial JUNIOR-PAM |
| Longitud del cable | 100 cm |
| Dimensiones | 13 cm x 2,5 cm (máx.) x 5,5 cm (máx.) (largo x ancho x alto) |
| Peso | 162 g (cable incluido) |
