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Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de fluorescencia de clorofila Móvil IMAGING-PAM Serie M entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción sobre el Sistema de fluorescencia de clorofila Móvil IMAGING-PAM Serie M

La versión MÓVIL del IMAGING-PAM ha sido especialmente desarrollada para la obtención de imágenes de fluorescencia de clorofila en el campo. El sistema de medición comparte características con la versión MINI del IMAGING-PAM, como un consumo de energía moderado y un área de obtención de imágenes de 24 x 32 mm.

La versión MÓVIL del IMAGING-PAM está especialmente dedicada al estudio de plantas pequeñas, vegetación del suelo y costras fotosintéticas. Una caja de aclimatación a la oscuridad recientemente desarrollada facilita las mediciones de campo del rendimiento cuántico fotosintético máximo del fotosistema II (F V /F M ). El mango extensible y el botón de disparo del cabezal de medición confieren al sistema excelentes propiedades ergonómicas.

La gran movilidad en el campo se consigue montando sobre una bandeja portaobjetos la tableta legible a la luz del sol y su unidad de control. El sistema de transporte se puede adaptar fácilmente a las dimensiones físicas individuales del usuario.

Para ver un ejemplo de aplicación, véase la revista Precision Agriculture . El desarrollo de la versión MÓVIL fue financiado por el Fondo de Propósito Especial del gobierno alemán, que se encuentra en el Landwirtschaftliche Rentenbank y la Institución Federal de Agricultura y Nutrición (BLE).

Componentes del sistema de la versión MÓVIL

Unidad de control múltiple

Cabezal de medición

Bandeja portabebés

Software

Tableta

Cajas de aclimatación a la oscuridad

Más artículos

Especificaciones para la versión MÓVIL IMAGING-PAM SERIE M

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Fluorómetro para el Seguimiento a Largo Plazo de la Fotosíntesis MONITORING-PAM entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

El fluorómetro de clorofila MONITORING-PAM está diseñado para el monitoreo sin supervisión, a largo plazo y en múltiples sitios de la fluorescencia de clorofila en el aire o bajo el agua. En cada sitio de medición, unidades emisor-detector compactas y robustas miden la fluorescencia de clorofila modulada y realizan análisis de pulsos de saturación.

Dependiendo de la configuración del sistema, se pueden medir simultáneamente hasta siete sitios por sistema MONITORING-PAM. En cada sitio, se registra la radiación fotosintéticamente activa (PAR) a nivel de muestra, de modo que se puedan derivar las tasas relativas de transporte de electrones a partir de los datos de PAR y los rendimientos fotoquímicos del fotosistema II.

Características generales MONITOREO-PAM

El fluorómetro de clorofila multisitio MONITORING-PAM opera varios cabezales emisores-detectores en paralelo. Un clip conectado a cada cabezal posiciona la muestra a una distancia y un ángulo definidos. Hay dos tipos de cabezales emisores-detectores disponibles, diseñados especialmente para un funcionamiento a largo plazo en el campo o bajo el agua.

Cada cabezal emisor-detector está equipado con un LED de potencia azul. Según la temporización exacta de la función, este LED proporciona luz de excitación de fluorescencia modulada, luz actínica y destellos de saturación. Una lente enfoca la radiación del LED en la muestra y recoge la fluorescencia. La intensidad máxima del pulso de saturación a nivel de muestra supera los 8500 μmol m -2 s -1.

MONITOREO-PAM Versión TERRESTRE

Configuración ONLINE

En la configuración ONLINE terrestre, la interfaz MONI-IB4/LAN debe estar siempre alimentada y permite conectar hasta cuatro cabezales MONI-HEAD/485 mediante RS-485. Su función LAN integra el sistema en una red local, aunque también ofrece conexiones RS-232 y USB para enlace directo con un PC. Las distancias entre componentes dependen del tipo de comunicación: alrededor de 10 m con USB o RS-232 y más de 100 m usando Ethernet.

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Configuración INDEPENDIENTE

La configuración STAND-ALONE del MONITORING-PAM permite monitorear la fotosíntesis de forma autónoma en lugares remotos sin acceso a electricidad. Funciona con el registrador MONI-DA alimentado por batería, dos paneles solares y hasta siete cabezales MONI-HEAD/485, ampliables usando un MICRO-HUB.
El MONI-DA guarda los datos en una tarjeta microSD y en un búfer interno de 8 MB. La conexión con un PC se hace mediante la interfaz MONI-IB1 por USB, y los datos pueden enviarse a distancia mediante un módem WiFi o satelital.

Monitoreo continuo

Un monitoreo continuo en Ilex aquifolium con la configuración independiente del MONITORING-PAM mostró que la fluorescencia (Fm' y F) disminuyó abruptamente durante una helada el 07.01.2009. La recuperación ocurrió recién a inicios de abril, cuando las temperaturas diurnas superaron los 20 °C y las nocturnas no bajaron de 5 °C. La prolongada reducción de fluorescencia a bajas temperaturas indica un aumento en la disipación de energía luminosa, un mecanismo que protege a la planta de daños por luz cuando el metabolismo no puede usar esa energía.

MONITOREO-PAM Versión ACUÁTICA

Configuración ONLINE

La configuración ONLINE de la versión AQUATIC del MONITORING-PAM permite la medición de la fotosíntesis de plantas sumergidas y macroalgas. La configuración ONLINE requiere una fuente de alimentación externa y se maneja desde un ordenador con Windows. La interfaz MONI-IB4/LANS permite la conexión a un ordenador con Windows a través de comunicación Ethernet, RS-232 o USB.

Se pueden conectar hasta cuatro cabezales emisores-detectores estancos MONI-HEAD/S a la interfaz MONI-IB4/LANS. Para ello, la interfaz dispone de cuatro conectores de entrada para conectar cables submarinos RS-485/S. La profundidad del agua de los lugares de medición se determina mediante la longitud de los cables submarinos RS-485/S, que por defecto es de 10 m.

Configuración INDEPENDIENTE

La configuración INDEPENDIENTE de la versión ACUÁTICA del MONITORING-PAM es adecuada para el monitoreo a largo plazo de la fluorescencia de la clorofila a profundidades de hasta 75 m. El sistema consta del sistema de adquisición de datos a batería impermeable MONI-DA/S, la interfaz para PC MONI-IB1/S y hasta siete cabezales emisores-detectores impermeables MONI-HEAD/S.

El MONI-DA/S funciona durante más de 4 semanas con batería y con siete MONI-HEAD/S conectados y un intervalo de pulso de saturación de 15 minutos. Los datos se registran en un búfer de anillo interno y en una tarjeta microSD no extraíble. Los datos se transfieren desde el MONI-DA/S a un ordenador a través de la interfaz MONI-IB1/S. La transferencia de datos inalámbrica es posible utilizando un módem WiFi hermético. El módem WiFi debe funcionar por encima de la línea de flotación porque el agua absorbe la señal WiFi.

Especificaciones

Componente / FunciónEspecificaciones generales
SistemaFluorómetro para monitoreo continuo de fluorescencia de clorofila; estudios de campo, fisiología vegetal y estrés ambiental
Parámetros medidosF₀, Fₘ, F, F₀’, Fₘ’, PAR, temperatura
Parámetros calculadosFᵥ/Fₘ, Y(II), NPQ, qP, qL, Y(NPQ), Y(NO), ETR, curvas de respuesta a la luz
Cabezal de medición (MONI-HEAD/485)LED azul (~470 nm); modos: luz de medición modulada, luz actínica, pulsos saturantes; sensores integrados: fluorescencia (>645 nm), PAR, temperatura; comunicación RS-485; resistente al exterior
Unidad de adquisición (MONI-DA)Registro autónomo; buffer interno + tarjeta microSD; batería recargable (compatible con panel solar); hasta 7 cabezales (ampliable)
Interfaz PC (MONI-IB4/LAN)Conexiones: RS-485 para cabezales, USB, RS-232 y Ethernet para PC; operación ONLINE; distancias: ~10 m USB/RS-232, >100 m Ethernet
Rango ambiental / durabilidadTemperatura de operación: –15 °C a +40 °C (varía según componente); construcción en aluminio resistente al ambiente
SoftwareWinControl v2/v3; adquisición continua, programación de rutinas, cálculo automático de parámetros, exportación de datos

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de Fluorescencia de Clorofila MINI IMAGING-PAM Serie M entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción sobre el Sistema de Fluorescencia de Clorofila MINI IMAGING-PAM Serie M

Gracias a su diseño compacto, la versión MINI es ideal para aplicaciones de campo. Como el área de imagen es mucho más pequeña que la de la versión MAXI (17 aumentos del área con la misma resolución), las intensidades de luz máximas son mayores, mientras que el consumo de energía es menor. Por este motivo, la versión MINI se puede utilizar fácilmente como una alternativa práctica para no depender de la red eléctrica o cuando se necesitan mayores aumentos.

Los cabezales de medición MINI Imaging rojo y azul también se pueden montar en el cabezal de medición estándar 3010-S del sistema de fluorescencia de intercambio de gases portátil GFS-3000 para que el software ImagingWin pueda comunicarse directamente con el software de intercambio de gases GFS-Win para el control y el intercambio de datos.

Configuraciones de la Versión MINI

Unidad de control múltiple

Cabezal de medición

Cámara CCD y lentes

Kit de montaje para cámara

Montaje

Computadora

Combinación de sistemas

Especificaciones de la versión MINI IMAGING-PAM SERIE M

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Microscópicos Hasta el Cloroplasto Individual MICROSCOPY-PAM entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

El MICROSCOPY-PAM es un fluorómetro de clorofila extremadamente sensible, diseñado para medir puntos microscópicos en muestras como preparaciones de tejido o suspensiones. Se basa en un microscopio de epifluorescencia modificado, equipado con un objetivo de gran apertura (20x Fluar) y fuentes de luz LED moduladas: azul de 470 nm para excitación y un LED rojo-naranja opcional de 625 nm. La fluorescencia de clorofila se detecta mediante un fotomultiplicador en un ocular especial, con diafragma iris y filtro dicroico que filtra la luz por encima de 650 nm, permitiendo mediciones precisas de fluorescencia modulada.

El sistema se controla mediante la unidad PAM-CONTROL, que permite operar el MICROSCOPY-PAM de forma independiente o conectarlo a un ordenador con Windows usando el software WinControl-3. Este software ofrece funciones avanzadas como análisis de pulsos de saturación, curvas de inducción y de luz, rutinas automatizadas y archivos batch para experimentos repetitivos. Permite calcular automáticamente parámetros clave de fluorescencia como F₀, Fm, F₀', Fm', Fv/Fm, qP, qL, qN, NPQ, Y(II), Y(NPQ), Y(NO) y ETR, y visualizar los datos en curvas de inducción y de luz. La versión anterior, WinControl-2, permite control en línea y análisis de pulsos de saturación, pero solo es compatible con Windows 7 de 32 bits.

Propiedades destacadas del MICROSCOPIO-PAM

Componentes del MICROSCOPIO-PAM

El MICROSCOPY-PAM utiliza un microscopio de epifluorescencia Zeiss AxioScope 5 con objetivo 20x y LED azul (470 nm) para excitación de fluorescencia; un LED rojo-naranja (625 nm) es opcional. Los LEDs se pueden usar tanto para luz actínica como para pulsos de saturación mediante modulación especial.

La fluorescencia de clorofila se detecta con un fotomultiplicador en un ocular con diafragma y filtro dicroico (>650 nm). El sistema es controlado por la unidad PAM-CONTROL, que permite operación independiente o mediante PC con WinControl 2 o 3. Incluye adaptadores USB/RS-232, cargador MINI-PAM/L, cable para registrador gráfico y caja de transporte.

Unidad de control universal PAM-CONTROL

La unidad PAM-CONTROL realiza mediciones de fluorescencia PAM de forma independiente, pero también actúa como interfaz entre el fluorómetro y una computadora Windows que ejecute la versión 2 o 3 del software WinControl. La unidad PAM-CONTROL forma parte de varios sistemas PAM, todos ellos con un tubo fotomultiplicador de alta sensibilidad para la detección de fluorescencia: el MICROSCOPY-PAM, el MICROFIBER-PAM y el WATER-PAM FIBER Version.

En los tres sistemas, un procedimiento de apagado automático protege el tubo fotomultiplicador contra daños causados ​​por altos niveles de fluorescencia o luz externa. La memoria de la unidad puede almacenar 4000 conjuntos de datos. Un amplio menú proporciona un control total de los ajustes del instrumento y una variedad de protocolos de medición.

Software para MICROSCOPY-PAM

El MICROSCOPY-PAM se opera mediante WinControl-3 en Windows, compatible con varios fluorómetros de Walz y la versión PAM-CONTROL, Permite:

Nota: WinControl-2 es una versión anterior, compatible solo con Windows 7 de 32 bits, que permite operación en línea y análisis de pulsos de saturación, con visualización de fluorescencia luz-oscuridad y recuperación de oscuridad.

Especificaciones para MICROSCOPÍA-PAM

Componente / FunciónCaracterísticas clave
Software WinControl-3Controla MICROSCOPY-PAM y otros fluorómetros Walz; compatible con Windows XP–10. Permite experimentos automáticos y análisis de pulsos de saturación.
Visualización de datosCurvas de inducción (Ft, NPQ, ETR) y curvas de luz (Y(II), Y(NPQ), Y(NO), ETR).
Análisis de pulsosCálculo automático de F₀, Fm, F₀', Fm', Fv/Fm, qP, qL, qN, NPQ, Y(II), Y(NPQ), Y(NO), ETR.
Exportación de datosFormatos CSV y TXT.
Rutinas automatizadasPulsos de saturación, curvas de inducción y luz, corrección de desfase, calibración de sensor.
Protocolos personalizadosArchivos batch o macros para experimentos automáticos.
WinControl-2Versión anterior, solo Windows 7 32-bit, operación en línea, análisis de pulsos de saturación, visualización luz-oscuridad y recuperación.

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de Fluorescencia de Clorofila MICROSCOPÍA IMÁGENES-PAM M entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción sobre el Sistema de Fluorescencia de Clorofila MICROSCOPÍA IMÁGENES-PAM M

La versión MICROSCOPÍA de la serie M de IMAGING-PAM ofrece análisis de imágenes a nivel de células individuales. Ofrece una mayor sensibilidad junto con un microscopio de epifluorescencia Axioscope 5 (Zeiss, Göttingen) modificado y la cámara CCD IMAG-K6 (chip de 2/3" con resolución primaria de 1392 x 1040 píxeles y agrupamiento de 4 píxeles).

El software ImagingWin tiene en cuenta las necesidades particulares de las aplicaciones de microscopía. Se puede obtener una imagen de vídeo en vivo del objeto utilizando el condensador-iluminador de luz pasante estándar del microscopio. Se proporciona una rutina especial de pulso de saturación para la evaluación óptima de Fo, Fm y Fv/Fm a niveles bajos de intensidad de excitación.

Para aplicaciones estándar, se proporciona un único LED Luxeon de alta potencia (470 nm o 625 nm) para la excitación, la iluminación actínica y los pulsos de saturación. Como alternativa, está disponible una sofisticada lámpara LED de microscopía roja, verde y azul que permite diferenciar entre varios grupos de algas (incluidas las cianobacterias) en biopelículas, de forma análoga a PHYTO-PAM .

Con nuestro fotómetro universal ULM-500, la calibración de la lista de luz interna resulta sencilla. Solo tiene que enchufar el ULM, colocar el sensor de luz MC-MQS-OVV en el plano focal y comenzar el procedimiento de calibración.

Configuraciones de la versión MICROSCOPY

Unidad de control múltiple

Cabezal de medición

Cámara CCD

Microscopio

Computadora

Opcional

Especificaciones para MICROSCOPÍA Versión IMAGING-PAM SERIE M

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sondeo de Células y Tejidos en Tapetes Microbianos y Hojas MICROFIBER-PAM entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

El MICROFIBER-PAM usa fibras ópticas delgadas (100 µm) para la excitación y detección de fluorescencia. La fibra delgada permite sondear puntos pequeños de superficies fotosintéticas heterogéneas como las costras del suelo.

Una “fibra de trabajo” (MF-F, accesorio), que se inserta en una hoja o en una estera fotosintética, mide los gradientes fotosintéticos dentro de la muestra. Para facilitar la penetración, la fibra de trabajo se puede extraer hasta una punta cónica de 10 a 30 μm.

Propiedades destacadas de la MICROFIBRA-PAM

El MICROFIBER-PAM utiliza un sistema de fibra óptica compuesto por dos pares de fibras conectadas mediante un acoplador. Una fibra conduce la luz del LED hacia la muestra y otra lleva la fluorescencia emitida al fotomultiplicador, con filtros que bloquean la luz del LED. Para medir atenuación de luz, se usan dos fibras ubicadas a lados opuestos de la muestra y se retiran los filtros

La excitación y detección están controladas por la unidad PAM-CONTROL, que puede funcionar de manera autónoma o mediante un ordenador con el software WinControl (v2 o v3). El sistema incluye cables de conexión (RS-232 y adaptador USB), cargador, cable para registrador, estuche de transporte y soporte.

Diagrama funcional MICROFIBRA-PAM

En la Medición de fluorescencia (FIG 1), la luz azul filtrada (<600 nm) viaja por fibras ópticas hasta la muestra y la fluorescencia emitida regresa por la misma vía al fotomultiplicador, que solo recibe la luz fluorescente gracias a filtros que bloquean la luz azul y dejan pasar >640 nm. El sistema usa un conjunto de adaptadores que incluye soporte y varios LED.

En la Medición de atenuación de luz (FIG 2), se retiran los filtros y se colocan dos fibras enfrentadas. La luz azul pasa directamente entre ellas y cualquier muestra interpuesta reduce la intensidad que llega al fotomultiplicador. La señal resultante permite calcular el grado de atenuación de la muestra.

Unidad de control universal PAM-CONTROL

La unidad PAM-CONTROL se puede utilizar para realizar mediciones de fluorescencia PAM independientemente de una computadora, pero también actúa como interfaz entre el fluorómetro y una computadora Windows que ejecute la versión 2 o 3 del software WinControl.

La unidad PAM-CONTROL forma parte de varios sistemas PAM, todos ellos con un tubo fotomultiplicador de alta sensibilidad para la detección de fluorescencia: el MICROSCOPY-PAM, el MICROFIBER-PAM y el WATER-PAM FIBER Version. En los tres sistemas, un procedimiento de apagado automático protege el tubo fotomultiplicador contra daños causados ​​por altos niveles de fluorescencia o luz externa.

La memoria de la unidad puede almacenar 4000 conjuntos de datos. Un amplio menú proporciona un control total de los ajustes del instrumento y una variedad de protocolos de medición.

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Solicitud de MICROFIBRA-PAM

Gradientes de fotoinhibición de PS II dependientes de la longitud de onda

Una opción que ofrece el MICROFIBER-PAM es la investigación de gradientes de características del fotosistema II dentro de la hoja. Para tales investigaciones, la punta puntiaguda de una fibra de trabajo (MF-F) se introduce en el tejido de la hoja mediante un micromanipulador y se realiza un análisis de pulsos de saturación a profundidades de penetración definidas.

Especificaciones de MICROFIBRA-PAM

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de fluorescencia de clorofila IMAGING-PAM Series M entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción sobre el Sistema de fluorescencia de clorofila IMAGING-PAM Series M

La familia IMAGING-PAM comprende las versiones MAXI, MINI y MICROSCOPY. Las diferentes versiones utilizan la misma unidad de control múltiple IMAG-CG. Además, la misma cámara puede utilizarse para diferentes versiones. Este modularidad permite cambiar de forma sencilla y económica entre las distintas aplicaciones y aumentos que ofrece la serie M de IMAGING-PAM. Las versiones MAXI y MINI se pueden combinar con el sistema de intercambio de gases GFS-3000 y, de esta manera, integran información espacial detallada sobre la fotosíntesis con un análisis exacto de la fijación de carbono fotosintético. Recientemente, se ha añadido a la versión MAXI un método avanzado para crear imágenes tridimensionales de plantas. Esta nueva configuración abre la posibilidad de proyectar datos de análisis de fluorescencia sobre la imagen tridimensional de la planta, de modo que se pueda analizar la fotosíntesis en el contexto de la arquitectura de toda la planta.

Propiedades destacadas de la familia IMAGING-PAM

Elevando la fluorescencia de la clorofila al nivel 3D

La nueva integración de un escáner 3D de precisión en la probada versión MAXI del fluorómetro IMAGING-PAM combina el análisis de pulsos de saturación con el conocimiento del tamaño, número, posición y ángulo de las hojas. Como resultado, se puede considerar la intensidad de luz efectiva por unidad de superficie foliar cuando se evalúan los efectos de la luz en la fotosíntesis o la fotoinhibición.

La configuración 3D proporciona una multitud de datos morfológicos adicionales para el fenotipado estructural de las plantas. Juntos, los parámetros morfológicos y los parámetros funcionales caracterizados fluorométricamente forman un nuevo ámbito en el fenotipado de plantas.

Fluorescencia de clorofila y fluorometría PAM

La fluorescencia de la clorofila es un indicador muy sensible de la fotosíntesis. La información cuantitativa sobre el rendimiento cuántico de la conversión de energía fotosintética se obtiene mediante la fluorometría PAM y el método de pulso de saturación (Schreiber U (2004) Pulse-Amplitude-Modulation (PAM) Fluorometry and Saturation Pulse Method: An Overview, pp. 279-319. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Países Bajos) .

Las mediciones de fluorescencia pueden generar una amplia gama de parámetros fotosintéticos, lo que proporciona información sobre el estado fisiológico de todos los organismos fotosintéticamente activos, incluidas plantas superiores, musgos y helechos, así como diversos tipos de algas, fitoplancton y biopelículas.

Imágenes de fluorescencia de clorofila

Con el avance de las cámaras CCD de alta sensibilidad y de los diodos emisores de luz (LED) extremadamente potentes, se ha hecho posible el desarrollo de los fluorómetros IMAGING-PAM, que no solo miden imágenes de la fluorescencia de la clorofila, sino que también son totalmente capaces de proporcionar todos los parámetros relevantes de la fluorescencia de la clorofila mediante el método de pulso de saturación. De esta manera, se pueden obtener imágenes de la actividad fotosintética y sus variaciones espaciotemporales.

Todos los fluorómetros IMAGING-PAM proporcionan imágenes de 17 parámetros diferentes. El parámetro de fluorescencia Ft se controla de forma continua. Fo y Fm se evalúan tras la adaptación a la oscuridad, lo que sirve como referencia para el análisis de extinción de la fluorescencia mediante el método de pulso de saturación.

Además de Fv/Fm, se pueden obtener imágenes del rendimiento cuántico de PS II después de la aclimatación a la oscuridad, también del rendimiento cuántico de PS II durante la iluminación, Y(II), y de los rendimientos cuánticos de disipación de energía regulada y no regulada, Y(NPQ), Y(NO), así como de la tasa aparente de transporte de electrones (ETR y PS).

Se proporciona una rutina para medir una imagen de absortividad PAR para las versiones MAXI y MINI del IMAGING-PAM (imagen Abs. basada en imágenes de NIR y remisión de luz roja). A partir de este parámetro también se calcula la tasa aparente de fotosíntesis y ya no es necesario utilizar el valor medio de absortividad PAR conocido comúnmente de 0,84 (ETR) para todas las áreas.

El parámetro PS/50 se muestra para representar la fotosíntesis aparente con ayuda del código de color falso que también se utiliza para los demás parámetros de la fotosíntesis.

Características generales IMAGING-PAM Serie M

La nueva versión 3D de IMAGING-PAM es especialmente adecuada para mediciones precisas de partes aéreas completas de plantas de muestra. Mide la altura exacta de las hojas y proporciona una descripción numérica clara de hojas individuales (tamaño, forma, ángulo, punto de equilibrio) y plantas enteras (radio de roseta, área de superficie y número de hojas).

Las versiones MAXI, MINI y MICROSCOPY están disponibles en varias configuraciones para diferentes aplicaciones, que difieren en geometrías ópticas y longitudes de onda de excitación. Mientras que la luz de excitación azul se utiliza normalmente para la obtención de imágenes de fluorescencia de plantas superiores y algas, se recomienda la excitación rojo-anaranjada para las cianobacterias.

Los cabezales de medición también pueden equiparse con LED especiales y conjuntos de filtros para obtener imágenes de fluorescencia de moléculas indicadoras como GFP. El uso de LED de potencia permite intensidades actínicas de hasta 5000 μmol m -2 s -1 (según el miembro de la Serie M y la configuración).

Para la medición de suspensiones se encuentran disponibles placas de filtro adicionales que mejoran la calidad de la imagen incluso con superficies reflectantes. Para mediciones PSII en condiciones de luz ambiental también es posible la comunicación con nuestro fotómetro universal ULM-500, de modo que los valores de luz en tiempo real se pueden transferir directamente al archivo de informe IMAGING-PAM.

Para la combinación de diferentes técnicas de medición como por ejemplo el intercambio de gases, hay adaptadores disponibles de modo que la obtención de imágenes PSII también se puede realizar bajo control climático combinado.

Configuraciones de las versiones 3D, MAXI, MINI y MICROSCOPY

Unidad de control múltipleImagen-CG
Cabezal de mediciónIMAG-MAX/L
(azul)
IMAG-MAX/LR
(rojo)
IMAG-MIN/B
(azul)
IMAG-MIN/R
(rojo)
IMAG-MIN/GFP
(GFP)
IMAG-L470M5
(azul)
IMAG-L625M5
(rojo anaranjado)
IMAG-RGB
(verde rojo azul)
Cámara CCD y lentesIMAG-K7
(lente zoom
K7-MAX/Z o lente fija
IMAG-MAX/S)
IMAG-K6
(lente fija
K6-MAX)
IMAG-K7
(lente fija
K7-MIN)
IMAG-K6
(lente fija
K6-MIN)
IMAG-K6
(lente fija
K6-MIN y portaobjetos con filtro detector
K6-MIN/FS)
Imagen-K6
Kit de montaje para cámaraK7-MAX/M o K6-MAX/MK7-MIN/M o K6-MIN/M 
Microscopio  IMAG-AXIOSCOPIO 5
MontajeIMAG-MAX/GS
IMAG-MAX/B
ST-101
IMAG-MAX/HF
IMÁGENES-MÍN/BK
IMÁGENES-MÍN/ST
IMÁGENES-S
 
ComputadoraImagen por ordenador
OpcionalIMÁGENES-MAX/FincluidoST-1010módulos reflectores adicionales
IMAG-AX-REF
Combinación de sistemasImagen-MAX/GWK1IMÁGENES-MIN/GFS 

Especificaciones para la versión IMAGING-PAM SERIE M

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Fluorómetro compacto para el seguimiento a largo plazo de la fotosíntesis MICRO-PAM entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción

Un sistema MICRO-PAM consta de varios fluorómetros de clorofila livianos para uso en el campo. Al ser capaz de monitorear la fotosíntesis en múltiples sitios durante semanas y meses, el MICRO-PAM está diseñado para estudiar las respuestas de las plantas a los cambios ambientales en la naturaleza y en condiciones controladas. Debido a sus cabezales de medición compactos, el MICRO-PAM es adecuado para muestras más pequeñas que las que se analizan normalmente con el MONITORING-PAM establecido.

El MICRO-PAM fue desarrollado originalmente para medir la fotosíntesis de líquenes que crecen sobre rocas o en costras biológicas del suelo. El campo de aplicación actual incluye plantas herbáceas, arbustos y árboles. Además de determinar el rendimiento de la fotosíntesis mediante la técnica de pulso de saturación, los cabezales de medición registran la intensidad de la luz y la temperatura mediante sensores externos, y la humedad mediante un sensor interno.

Propiedades destacadas del MICRO-PAM

Características generales MICRO-PAM

Los cabezales de medición de un sistema MICRO-PAM se denominan MICRO-HEAD/3B, donde el “3” especifica el diámetro en mm de la guía de luz y la “B” representa el color azul de la luz de medición y actínica.

El MICRO-HEAD/3B posee un LED de potencia azul con emisión máxima a 465 nm y un ancho completo a la mitad de su longitud máxima de 22 nm. La intensidad máxima de luz actínica a nivel de muestra es de 3000 μmol m -2 s -1, la intensidad máxima del pulso de saturación es de 8000 μmol m -2 s -1. El MICRO-HEAD/3B está equipado con un clip de muestra. Un sensor PAR de respuesta coseno se coloca paralelo al plano de la muestra. Un termopar que toca el lado inferior de la muestra mide la temperatura. La humedad se mide mediante un sensor de tipo capacitivo ubicado dentro de la carcasa del fluorómetro. A pedido, se proporcionará un soporte especial para montar el MICRO-HEAD/3B en superficies sólidas. Los sistemas MICRO-PAM pueden funcionar en la configuración ONLINE, en la que se pueden conectar hasta cuatro cabezales de medición a través de la caja de interfaz para PC MONI-IB4/LAN a un puerto USB de un ordenador con Windows que ejecute WinControl-3. En la configuración OFFLINE, los cabezales de medición se conectan directamente o a través del denominado MINI-HUB a un sistema de adquisición de datos MONI-DA.

Comparación de sistemas de monitoreo

SistemaMICRO-PAMMoni-pam
Cabezal de mediciónMICRO-CABEZA/3BCABEZA MONI/485
Peso96 gramos205 gramos
Volumen189 cm3365 cm3
Sensor PARExternoInterno
Sensor de temperaturaExterno (Termopar)Interno
Sensor de humedadInternoAusente
Vía ópticaFibraLente
Resistencia al climaRecubrimiento de circuitos electrónicos para protegerlos contra la humedad.Carcasa impermeable
Versión submarinaNo disponibleDisponible
El consumo de energía3 W durante SP máx.7 W durante SP máximo

Cabezales de medición versión AZUL y ÁMBAR
MICRO‑HEAD/3B y MICRO‑HEAD/3A

Los sistemas MICRO-PAM se pueden configurar con los cabezales de medición MICRO-HEAD/3B y MICRO-HEAD/3A. El cabezal de medición MICRO-HEAD/3B analiza la fotosíntesis con luz azul, que tiene una intensidad máxima a 460 nm y un ancho completo a la mitad de su longitud máxima de 27 nm (Fig. 1). Los sistemas MICRO-PAM y MONI-PAM que emplean luz azul han demostrado su eficacia en la investigación terrestre y acuática.

El cabezal de medición MICRO-HEAD/3A posee un LED ámbar con un pico de emisión a 598 nm y un ancho completo a la mitad de su longitud máxima de 22 nm (Fig. 1). Las cianobacterias absorben mejor la luz ámbar que la luz azul. En consecuencia, la calidad de la señal PAM excitada por la luz ámbar es superior a la excitada por la luz azul. Por este motivo, los sistemas MICRO-PAM configurados con cabezales de medición MICRO-HEAD/3A son especialmente adecuados para sondear esteras y líquenes de cianobacterias o costras que contengan cianobacterias.

Las versiones AZUL y ÁMBAR se distinguen además por la ventana espectral para la detección de fluorescencia. La versión AZUL detecta la fluorescencia en longitudes de onda > 600 nm, mientras que la versión ÁMBAR detecta la fluorescencia en longitudes de onda > 700 nm (Fig. 2).

micro-pam-5-kasalab-colombia.png
Espectros de emisión de LED típicos normalizados a sus valores máximos. La curva azul corresponde al espectro del LED azul del cabezal de medición MICRO-HEAD/3B, la curva ámbar representa la emisión del LED ámbar del cabezal de medición MICRO-HEAD/3A. Se muestran las longitudes de onda de pico y el ancho total a la mitad del máximo (entre corchetes) en nm.
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Espectros de transmitancia de los filtros de detección en el cabezal de medición MICRO‑HEAD/3B (versión AZUL, línea roja) y el cabezal de medición MICRO‑HEAD/3A (versión ÁMBAR, línea roja oscura).

Configuración ONLINE de MICRO-PAM

En la configuración ONLINE, el sistema MICRO-PAM se maneja mediante el software WinControl 3 que se ejecuta en un ordenador con Windows. Se pueden conectar hasta 4 MICRO HEAD/3B a un puerto USB de ordenador mediante la caja de interfaz para PC MONI-IB4/LAN. La longitud estándar del cable entre la caja de interfaz para PC MONI-IB4/LAN y el MICRO HEAD/3B es de 10 m.

La caja de interfaz para PC MONI-IB4/LAN permite la integración de la configuración en línea en una red de área local (LAN). El puerto Ethernet puede estar situado a una distancia de hasta 100 m de la MONI-IB4/LAN. Para aplicaciones especiales, la caja de interfaz también ofrece comunicación RS 232.

Especificaciones MICRO-PAM ONLINE

Configuración INDEPENDIENTE de MICRO-PAM

La configuración INDEPENDIENTE incluye el sistema de adquisición de datos MONI-DA, que permite el funcionamiento con baterías del sistema MICRO-PAM. La configuración INDEPENDIENTE incluye paneles solares que permiten la adquisición de datos durante períodos muy largos de tiempo, independientemente de la red eléctrica. Un módem opcional envía datos en tiempo real a un servidor dedicado para que el usuario los descargue.

El distribuidor de cuatro vías MICRO-HUB conecta 4 cabezales de medición MICRO-HEAD/3B a un único puerto del MONI-DA. El número máximo de cabezales de medición MICRO-HEAD/3B por MONI-DA es 16. Como el MONI-DA tiene 7 puertos de entrada, el número de 16 se logra utilizando 3 interfaces MICRO-HUB que conectan cada un 4 cabezal de medición al MONI-DA y vinculan directamente otros 4 cabezales de medición al MONI-DA.

Especificaciones INDEPENDIENTE de MICRO-PAM

Aplicaciones para MICRO-PAM

Datos en tiempo real

Vea cómo responde la fotosíntesis a la intensidad de la luz y la temperatura. Un sistema MICRO-PAM instalado cerca de la casa de los Walz envía datos en vivo a través de un módem a un servidor Walz dedicado. Después de cada pulso de saturación, se agrega un conjunto completo de datos al registro existente. El sistema MICRO-PAM consta de 6 cabezales de medición, una unidad de adquisición de datos MONI-DA y un módem. Elija entre 3 tipos de gráficos: Y(II) + PAR, Y(II) + ETR o Temperatura + PAR + Humedad. Puede descargar los datos y visualizarlos utilizando el software WinControl-3 .

Aclimatación de las hojas al frío

Se utilizó un sistema MICRO-PAM para monitorear la aclimatación del fotosistema II a la disminución de la temperatura en otoño. Se realizaron experimentos al aire libre con hojas de acebo ( Ilex aquifolium ) del 9 de octubre al 6 de noviembre de 2019. Posición: latitud: 49.656564 | longitud: 11.09793. Durante el período de monitoreo, el F M ' máximo mostró una tendencia a disminuir y exhibió valores más bajos entre los días 20 y 24 (Fig. 1). En promedio, el PAR fue mayor en la parte inicial del experimento en comparación con la parte final, pero no se observó una disminución comparable con el F M ' (Fig. 2). La temperatura mostró una tendencia a la baja, al igual que en el caso de F M ', los valores mínimos se registraron entre los días 20 y 24. El análisis de la relación entre la temperatura máxima de F M ' y la mínima mediante regresión lineal arrojó un coeficiente de determinación de 0,6 (Fig. 4), lo que sugiere que los dos parámetros están relacionados entre sí. La extinción no fotoquímica sostenida podría ser un factor involucrado en esta relación fluorescencia/temperatura.

Fotosíntesis de líquenes (Prototipo MICRO-PAM)

Los prototipos de los cabezales de medición MICRO-HEAD/3B se han utilizado con éxito para monitorear la fotosíntesis de líquenes que crecen en condiciones climáticas extremas. Los sitios experimentales incluyen Tierra del Fuego y la Antártida. El siguiente cartel describe la configuración experimental y muestra datos a largo plazo de PAR, temperatura, rendimiento del fotosistema II y tasa de transporte de electrones calculada.

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de fluorescencia de clorofila Maxi IMAGING-PAM Serie M entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción Sistema de fluorescencia de clorofila Maxi IMAGING-PAM Serie M

La versión MAXI del IMAGING-PAM Serie M utiliza un conjunto de LED muy compacto y potente de 300 W para la iluminación homogénea de áreas de 10 x 13 cm (placas de microtitulación) con excitación modulada por pulsos, luz actínica y pulsos de saturación.

Hay dos cámaras CCD diferentes disponibles. Para aplicaciones de alta sensibilidad se recomienda la IMAG-K6 (chip de 2/3", 1392 x 1040 píxeles con agrupamiento de 4 píxeles). Para aplicaciones estándar está disponible la IMAG-K7 (chip de 1/2", 640 x 480 píxeles), que se puede utilizar junto con el potente objetivo zoom K7-MAX/Z (F1.0/f=8-48 mm). De este modo, el sistema ofrece un área de imagen de 10 x 13 cm sin escalas hasta 13 x 22 mm con resolución constante.

Para la mayoría de las aplicaciones se recomienda un soporte de montaje especial con protección ocular (IMAG-MAX/GS), que cuenta con una cubierta de plexiglás roja, a través de la cual se puede observar la fluorescencia roja de la clorofila. En la parte inferior del soporte de montaje IMAG-MAX/GS se puede colocar una platina xy para posicionamiento variable de la muestra o una placa multipocillo a una distancia de trabajo definida de 18,5 cm.

La placa inferior se puede quitar para poder levantar todo el soporte (patas incluidas) para obtener imágenes de plantas que crecen en bandejas o macetas; además, es posible combinarlo con la cubeta de intercambio de gases grande 3010-GWK1 para el GFS-3000 utilizando juegos de adaptadores opcionales.

Configuraciones de la versión MAXI

Unidad de control múltiple

Cabezal de medición

Cámara CCD y lentes

Kit de montaje para cámara

Montaje

Computadora

Opcional

Combinación de sistemas

Especificaciones de la versión MAXI IMAGING-PAM SERIE M

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de fluorescencia de clorofila Hexagon-Imaging-PAM entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción

El HEXAGON-IMAGING-PAM es el sistema de obtención de imágenes Walz más grande del mercado. A pesar de su gran área de medición, el instrumento es lo suficientemente flexible como para medir una amplia variedad de muestras, como plantas en macetas individuales, plántulas en bandejas de plantas más grandes o muestras recolectadas de plantas superiores o inferiores.
Puede medir áreas de 20 x 24 cm con una resolución de hasta 1000 x 1200 px (agrupamiento 2x2), según el principio PAM, con la máxima precisión.
A diferencia del sistema de obtención de imágenes MAXI, significativamente más pequeño, el HEXAGON-IMAGING-PAM ofrece un área de medición cuatro veces mayor que el MAXI-IMAGING-PAM más pequeño y una resolución de imagen de hasta 1,2 MP (agrupamiento desactivado). Esta alta resolución da como resultado un tamaño de píxel de 100 x 100 µm.
Durante el proceso de diseño, pusimos especial énfasis en la iluminación uniforme y sin sombras del área de medición y diseñamos la refrigeración de los paneles de manera muy eficiente para una larga vida útil de los LED. El HEXAGON-IMAGING-PAM también se puede utilizar para determinar el valor Fo' de las muestras que se están investigando. Para ello, el instrumento dispone de un panel LED rojo lejano adicional de doble circuito con el que se puede dosificar de forma muy fina la luz FR y también la luz FR con un componente rojo más alto.
El nombre HEXAGON-IMAGING-PAM deriva de la forma de los paneles individuales que forman el panel principal. La forma elegida ofrece la mejor posibilidad de lograr la iluminación ideal del área de la muestra. Las subunidades del panel de forma hexagonal más pequeñas permiten una mejor compensación de los desequilibrios de los LED para lograr resultados aún más reproducibles.
En el HEXAGON-IMAGING-PAM, la electrónica de control está integrada en el cabezal de medición, de modo que, a pesar de la gran superficie de medición, se dispone de un dispositivo bastante compacto.

Propiedades excepcionales del HEXAGON-IMAGING-PAM

Fluorescencia de clorofila y fluorometría PAM

La fluorescencia de la clorofila es un indicador muy sensible de la fotosíntesis. La información cuantitativa sobre el rendimiento cuántico de la conversión de energía fotosintética se obtiene mediante la fluorometría PAM y el método de pulso de saturación (Schreiber U (2004) Pulse-Amplitude-Modulation (PAM) Fluorometry and Saturation Pulse Method: An Overview, pp. 279-319. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Países Bajos).
Se puede derivar una amplia gama de parámetros fotosintéticos a partir de las mediciones de fluorescencia, lo que proporciona información sobre el estado fisiológico de todos los organismos fotosintéticamente activos, incluidas las plantas superiores, los musgos y los helechos, así como varios tipos de algas, fitoplancton y biopelículas.

Imágenes de fluorescencia de clorofila

Con el avance de las cámaras CCD de alta sensibilidad, seguidas de los modernos chips de cámara de tipo CMOS, junto con los diodos emisores de luz (LED) extremadamente potentes, se ha hecho posible el desarrollo de fluorómetros IMAGING-PAM que no solo miden imágenes de fluorescencia de clorofila sino que también son totalmente competentes para proporcionar todos los parámetros relevantes de fluorescencia de clorofila, utilizando el método de pulso de saturación. De esta manera, se pueden obtener imágenes de la actividad fotosintética y sus variaciones espacio-temporales.
En los últimos años, la tendencia ha sido cada vez más hacia cámaras CMOS de muy bajo ruido que ofrecen altas sensibilidades. La tecnología LED también está haciendo un progreso continuo para que se puedan lograr altas intensidades de irradiación con menor potencia. Un problema que a menudo se pasa por alto en los LED es el calentamiento, que provoca cambios en su rendimiento. Por ello, con el nuevo HEXAGON-IMAGING-PAM nos hemos centrado especialmente en compensar estos cambios de potencia y abrir así nuevas dimensiones de precisión de medición en la homogeneidad de la imagen y la iluminación. Esto también abre la puerta a la integración de nuevos métodos de medición en el software. Todos los fluorómetros IMAGING-PAM proporcionan imágenes para 17 parámetros diferentes. El parámetro de fluorescencia Ft se monitorea continuamente y los valores cinéticos también se pueden exportar con una velocidad de reloj de 150 ms. Fo y Fm se evalúan después de la adaptación a la oscuridad, lo que sirve como referencia para el análisis de extinción de la fluorescencia mediante el método de pulso de saturación. Además de Fv/Fm, se puede obtener imágenes del rendimiento cuántico de PS II después de la aclimatación a la oscuridad, también del rendimiento cuántico de PS II durante la iluminación, Y(II), y de los rendimientos cuánticos de disipación de energía regulada y no regulada, Y(NPQ), Y(NO), así como de la tasa aparente de transporte de electrones (ETR).

Características generales HEXAGON-IMAGING-PAM

En el desarrollo del HEXAGON-IMAGING-PAM hemos seguido los deseos de nuestros clientes y, además de una superficie ampliada, también hemos revisado el control LED para crear espacio en las especificaciones técnicas para nuevas aplicaciones. La carcasa también se ha adaptado a las múltiples aplicaciones de nuestros clientes y permite la medición de hojas, algas en recipientes y organismos bentónicos, pero también plantas enteras en macetas o bandejas de plantas sin largos tiempos de conversión.
También se ha tenido en cuenta la seguridad. Los fuertes pulsos de luz con los que trabajan los instrumentos PAM no deben dañar los ojos del experimentador. Por ello, hemos integrado un apagado de seguridad en el HEXAGON-IMAGING-PAM, que suprime todas las intensidades de luz fuertes si se abre la puerta durante un experimento.
Después de iniciar el software, el HEXAGON-IMAGING-PAM funciona en modo de agrupamiento de píxeles de 2x2 en un área de 20 x 24 cm. Sin embargo, una función de zoom especial permite al usuario hacer zoom en un cuarto libremente seleccionable del área de medición sin cambiar la resolución de la imagen. De esta forma, sin perder sensibilidad, es muy fácil trabajar con un mayor aumento en un área de medición más pequeña.

Especificaciones para la versión 3D IMAGING-PAM SERIE M

Todas las especificaciones están sujetas a cambios sin previo aviso.

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de medición de fluorescencia de clorofila DUAL-PAM-100 entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción

El sistema básico consta de un fluorómetro de clorofila PAM de alto rendimiento para analizar el fotosistema II y un espectrómetro de absorbancia de longitud de onda dual para analizar el fotosistema I. Se ha desarrollado una innovadora técnica de modulación de pulsos para medir estas dos señales simultáneamente y con una resolución temporal excepcionalmente alta.

En principio, el sistema mide una señal de un solo canal junto con una señal diferencial de dos canales. En el sistema básico, estas dos señales son la fluorescencia PAM del fotosistema II y el cambio de absorción del fotosistema I. El DUAL-PAM-100 no se limita a los análisis de los fotosistemas I y II. Por ejemplo, el accesorio “módulo emisor-detector P515/535” mide los cambios de dispersión como señal de absorción de un solo canal a 535 nm, y el desplazamiento de la banda electrocrómica de la energización de la membrana como señal de dos canales con 515 nm como muestra y 550 nm como longitud de onda de referencia.

Características distintivas del DUAL-PAM-100

Versión Modular DUAL-PAM-100

El sistema de medición DUAL-PAM está disponible en versión MODULAR (DUAL-PAM-100) y en versión FIBER (DUAL-PAM/F). La versión MODULAR tiene fuentes de luz y detección de señales ubicadas en cabezales de medición separados, la muestra se coloca entre los cabezales de medición y los cambios de absorción del fotosistema I se miden en el modo de transmisión. La versión FIBER tiene fuentes de luz y detección de señales en la unidad central, la muestra se coloca frente a la fibra óptica y los cambios de absorción del fotosistema I se miden en el modo de remisión.

Los cabezales de medición de la versión MODULAR se pueden intercambiar fácilmente. Mediante el uso de varios módulos accesorios, la VERSIÓN MODULAR puede medir el desplazamiento de la banda electrónica causado por la activación de la membrana, la fluorescencia de NADPH, la fluorescencia de colorantes sensibles al pH y la fluorescencia en dos bandas de onda diferentes. La versión FIBER carece de esta flexibilidad, pero puede resultar ventajosa cuando solo son de interés las actividades del fotosistema II y del fotosistema I.

Especificaciones de la versión MODULAR DUAL-PAM-100

Versión FIBRA DUAL-PAM/F

La unidad de potencia y control de la versión FIBER, DUAL-PAM/F, contiene todas las fuentes de luz actínica y de medición, así como el detector de señal de fotodiodo. Se utilizan fibras ópticas para guiar la luz desde la unidad de potencia y control hasta la muestra y para dirigir la luz desde la muestra hacia atrás.

El DUAL-PAM/F está diseñado para evaluar las actividades de PS II midiendo la fluorescencia inducida por el rojo, y las actividades de PS I midiendo las intensidades de la luz reflejada a 830 y 870 nm. La versión de fibra óptica es necesaria cuando las muestras opacas no permiten mediciones de P700 en el modo de transmisión, pero también se utiliza en estudios de campo y para la detección de colecciones de plantas mutantes.

Especificaciones de la versión FIBER DUAL-PAM-100

Medición simultánea de la fluorescencia de la clorofila en longitudes de onda cortas y largas

Se emplearon el soporte de cabezal de medición de 90 grados DUAL-H90 y filtros ópticos especiales para medir la fluorescencia de PAM simultáneamente en el rango espectral por debajo de 700 nm (sw) y por encima de 700 nm (lw). La configuración experimental mostró que la fluorescencia sw era más variable, lo que daba como resultado mayores rendimientos fotoquímicos de PSII en comparación con la fluorescencia lw. Los rendimientos fotoquímicos de PSII aparentemente más altos se pueden explicar por los bajos niveles de fluorescencia constante del fotosistema I en la ventana espectral sw. En el rango lw, los rendimientos fotoquímicos de PSII se subestiman debido a la mayor fluorescencia de fondo del fotosistema I.

dual-pam-100-5-kasalab-colombia.jpg
Registro simultáneo de la fluorescencia de longitud de onda corta (sw) y longitud de onda larga (lw) de una hoja (laurel cerezo, Prunus laurocerasus L.). Se formó una curva de luz, compuesta por 7 pasos de luz con intensidad creciente, seguida de un período de oscuridad.
dual-pam-100-6-kasalab-colombia.jpgRegistro simultáneo de la fluorescencia de longitud de onda corta (sw) y longitud de onda larga (lw) de una hoja (nogal común, Juglans regia L.). Cinética de fluorescencia rápida para la determinación de F(0), F(M). En el presente ejemplo, lwF (V)/F(M) = 0,837 y swF(V) /F(M) = 0,876.

Software del Dual-PAM-100

1. El software DualPAM gestiona mediciones complejas de fluorescencia y P700
• Permite mediciones simultáneas de doble canal (fluorescencia + P700), mostrando la interacción entre PSII y PSI.
• Calcula automáticamente parámetros clásicos y modernos, incluyendo efectos de transferencia de energía en PSII.
2. Permite análisis avanzados: pulsos de saturación, cinética rápida y curvas de luz
• Ejecuta análisis de pulso de saturación en PS I y PS II.
• Admite medición de cinética rápida (400 kHz), tanto en escala lineal como logarítmica.
• Produce curvas de luz para evaluar capacidad de transporte de electrones y limitaciones de los fotosistemas.
3. Manejo flexible de archivos, configuración y activación
• Permite crear y guardar una cantidad ilimitada de perfiles de configuración y activación (pulsos, iluminación, modos de medición).
• Las activaciones pueden programarse con una resolución extremadamente fina (2,5 µs).
Todas las configuraciones pueden reproducirse exactamente en experimentos futuros.
4. Gráficos y análisis avanzados en tiempo real
• Los rendimientos cuánticos Y(I) y Y(II) se grafican automáticamente uno contra el otro para evaluar el equilibrio entre fotosistemas.
• Permite identificar cambios dinámicos en PS I y PS II durante inducción luz-oscuridad.
• La señal P700 ofrece calidad equivalente a la fluorescencia, incluso en alta resolución temporal.
5. Sistema completo de registro e informes
• Guarda automáticamente todos los datos (cinética lenta, cinética rápida, saturaciones individuales).
• Permite exportar informes a Excel y añadir comentarios.
• Documenta todos los cambios de configuración, garantizando trazabilidad total.

Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de Medición de Fluorescencia de Plastocianina, Ferredoxina y Clorofila DUAL-KLAS-NIR entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.

Introducción

El DUAL-KLAS-NIR mejora al DUAL-PAM-100 al usar cuatro pares de longitudes de onda NIR, lo que permite distinguir con precisión los cambios redox de plastocianina (PC), P700 y ferredoxina (Fd). Obtiene sus espectros in vivo, permitiendo monitorear en tiempo real estos componentes y calcular relaciones como PC/P700 y Fd/P700.

También funciona como fluorómetro PAM, pudiendo excitar con luz verde o azul, donde la luz verde permite analizar capas más profundas y compararlas mejor con las señales NIR.
El software es similar al del DUAL-PAM-100, lo que facilita su uso, y ofrece rutinas automatizadas para ejecutar protocolos complejos con facilidad.

Características destacadas del Sistema de Medición de Fluorescencia de Plastocianina, Ferredoxina y Clorofila DUAL-KLAS-NIR

Espectros de modelos diferenciales (DMP) para la deconvolución de las señales NIR

Los espectros NIR de P700, PC y Fd son amplios y difíciles de separar, además de tener coeficientes de extinción muy distintos. Usando pares de longitudes de onda específicos se pueden obtener señales enriquecidas en cada componente, pero no completamente limpias.

Para resolver esto, el sistema emplea el método DMP (gráfico de modelo diferencial), que permite deconvolucionar sin conocer espectros diferenciales exactos. Con experimentos diseñados para aislar temporalmente los cambios redox de cada componente, el software obtiene una huella espectral propia de P700, PC y Fd. También se reconoce que los centros FA y FB del fotosistema I pueden contribuir parcialmente a la señal atribuida a Fd.

Solicitudes para el DUAL-KLAS-NIR

El DUAL-KLAS-NIR es único en su clase, ya que proporciona señales deconvolucionadas en línea de los estados redox in vivo de P700, PC y Fd en tiempo real. Esto abre un campo de investigación completamente nuevo con aplicaciones que quizás no se nos hayan ocurrido todavía. En particular, por primera vez se puede obtener información cinética simultánea sobre la compleja interacción entre las reacciones en los lados donante y aceptor de PS I, incluida información sobre el transporte cíclico de electrones alrededor de PS I.

En todas las mediciones anteriores, la señal P700 contenía siempre contribuciones de Fd y cantidades variables de PC, dependiendo del método utilizado para reducir esta contribución. El panel C de la figura ilustra la dependencia de la intensidad de la luz del rendimiento cuántico efectivo de PSI Y(I), el rendimiento cuántico efectivo de PSII Y(II) y el rendimiento cuántico efectivo de PSII corregido para la fluorescencia de PSI Y(II)corr de Brassica napus .

En una transición de oscuridad a luz, primero comienza a acumularse PC oxidado y solo con cierto retraso el P700 oxidado. La pendiente inicial de la señal de PC limpia ahora se puede utilizar como una medida para el tamaño efectivo de la antena del PS I. La segunda figura amplía los cambios iniciales de absorbancia y muestra la gran diferencia en la pendiente inicial de PC (rojo) y P700 (azul).

Tiene una ventana para visualizar los cambios simultáneos en los estados redox de P700 y PC entre sí. Esto permite una estimación de la constante de equilibrio aparente entre PC y P700. La figura muestra un ejemplo de un gráfico redox de P700 versus PC.

Durante un pulso de saturación aplicado a una hoja bien adaptada a la oscuridad, el conjunto de Fd se reduce y en un período posterior de oscuridad se vuelve a oxidar lentamente. Cuando el flujo de electrones en el lado aceptor del PSI se ha activado, la cinética de reoxidación se vuelve mucho más rápida. Después de la activación del lado aceptor del PSI, la inactivación en la oscuridad se puede seguir monitoreando la velocidad a la que el Fd se reoxida después de un pulso de sonda. Estas cinéticas se pueden ajustar con una rutina de ajuste exponencial. El Panel A ofrece ejemplos de la cinética de reoxidación del Fd ajustada con una rutina de ajuste exponencial y el Panel B muestra la cinética de inactivación en la oscuridad del lado aceptor del PSI para una hoja de Hedera helix .

Los cambios máximos de transmitancia NIR de PC, P700 y Fd son proporcionales al contenido de estos compuestos en la hoja/muestra y las proporciones de los coeficientes de extinción de PC, P700 y Fd son constantes. Esto hace posible investigar las proporciones PC/P700 y Fd/P700 y, por lo tanto, los tamaños relativos de los depósitos de PC y Fd en diferentes especies o bajo diferentes condiciones (por ejemplo, sol/sombra, estrés/no estrés) de manera rutinaria con el DUAL-KLAS-NIR. Se observa que las proporciones altas de PC/P700 se correlacionan con valores altos de ETR. La figura ilustra que las hojas de sol y sombra de, en este caso, Hedera helix tienen contenidos de PC y Fd considerablemente diferentes en relación con P700.

Especificaciones para DUAL-KLAS-NIR