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Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Fluorómetro subacuático con espectrómetro en miniatura Diving-PAM-II entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.
El Diving-PAM-II es un fluorómetro subacuático diseñado para laboratorio y trabajo en campo, que emplea LEDs como única fuente de luz, lo que garantiza sincronización precisa, cero sobrecalentamiento y mediciones estables. Incluye un sensor PAR interno para monitorear la intensidad de iluminación y una pantalla B/N de bajo consumo que muestra datos y configuraciones en tiempo real. El sistema integra el espectrómetro MINI-SPEC, que mide el espectro PAR según la profundidad, calcula automáticamente el PAR total externo y permite análisis espectrales de fluorescencia y reflectancia.
El equipo, con diseño cilíndrico, está certificado para operar hasta 50 m de profundidad, incorporando sensores de presión y temperatura para registrar condiciones ambientales. Utiliza un LED de alta potencia para luz actínica y pulsos de saturación, y un LED rojo lejano para excitación selectiva de PSI. La medición se realiza mediante una fibra óptica que conecta el instrumento con la muestra.
Durante el análisis, el Diving-PAM-II calcula automáticamente todos los parámetros del pulso de saturación, optimizando la evaluación de la actividad fotosintética bajo diferentes condiciones de luz y profundidad.
La diferencia entre las versiones AZUL (DIVING-PAM-II/B) y ROJA (DIVING-PAM-II/R) del fluorómetro radica en el LED primario y en la ventana de detección.
La versión AZUL usa un LED azul que emite como máximo alrededor de 475 nm y detecta fluorescencia >630 nm; la versión ROJA usa un LED rojo que emite como máximo alrededor de 655 nm y detecta fluorescencia >700 nm.
Ambas incluyen un LED rojo lejano adicional para la excitación específica del fotosistema I.
 | Espectros de emisión LED típicos normalizados a sus valores máximos. La curva azul corresponde al espectro del LED azul del DIVING-PAM-II/B, la curva roja representa el LED rojo del DIVING-PAM-II/R. Ambas versiones del DIVING-PAM-II poseen un LED rojo lejano que emite como máximo por encima de los 700 nm (curva más a la derecha). Se indican la longitud de onda máxima y el ancho completo a la mitad del máximo (entre paréntesis). |
 | Espectros de transmitancia de los filtros de detección en el DIVING-PAM-II/B (versión AZUL, línea roja) y DIVING-PAM-II/R (versión ROJA, línea roja oscura). |
¿Versión AZUL o ROJA?
-Su amplio rango de detección de fluorescencia hace que la versión AZUL sea más sensible que la versión ROJA. En muestras con alto contenido de clorofila, gran parte de la fluorescencia de longitud de onda corta, que potencialmente puede ser detectada por la versión AZUL, es reabsorbida por la clorofila. Por lo tanto, en tales muestras la sensibilidad de la versión AZUL es solo ligeramente mejor que la de la versión ROJA.
-SENSIBILIDAD. La versión AZUL detecta la fluorescencia de la clorofila en longitudes de onda cortas (650 – 700 nm) y en longitudes de onda largas (> 700 nm), pero la ventana de detección de la versión ROJA se limita a longitudes de onda largas (ver Fig. 2 arriba). La ventana de detección más amplia hace que la versión AZUL sea más sensible que la versión ROJA. En muestras con alto contenido de clorofila (por ejemplo, hojas verdes), una gran parte de la fluorescencia de la clorofila en longitudes de onda más cortas es débil porque se reabsorbe dentro de la muestra. En tales muestras, la sensibilidad de la versión AZUL es solo ligeramente mejor que la de la versión ROJA.
-CIANOBACTERIAS. Las cianobacterias suelen absorber mal en el rango azul, pero mejor en el rango rojo. La absorción ineficiente de la luz da como resultado señales de fluorescencia bajas. Por lo tanto, la versión ROJA normalmente se prefiere a la versión AZUL en los estudios de cianobacterias.
LHC II. La fuente de luz actínica azul del MINI-PAM-II/B excita la banda ancha de longitud de onda corta del principal complejo de captación de luz del fotosistema II en plantas superiores y algas verdes, el LHC II. La luz roja del MINI-PAM-II/R excita la banda de longitud de onda larga, comparativamente menor, del LHC II. Por lo tanto, si la excitación del LHC II es importante, la versión AZUL podría ser ventajosa.
-MOVIMIENTOS DE LOS CLOROPLASTOS. El azul es absorbido por los fotorreceptores de luz azul, que pueden estimular respuestas como la reubicación de los cloroplastos en las plantas superiores. La reubicación de los cloroplastos puede afectar la señal de fluorescencia al cambiar la eficiencia de la absorción de la luz. Este efecto es difícil de distinguir de otros mecanismos de extinción de la fluorescencia. La elección de la versión ROJA excluye estos efectos de la luz azul.
Medición de espectros de PAR, reflectancia y fluorescencia
El espectrómetro miniatura MINI-SPEC es un instrumento para exteriores compacto y robusto para recopilar información espectral del entorno lumínico y de la muestra.
 | - Espectros de luz natural medidos justo por encima de la superficie del agua y a distintas profundidades de buceo, como indica la leyenda. A medida que aumenta la profundidad, las intensidades en el rango espectral rojo disminuyeron más que en el rango espectral azul. Esto significa que la fotosíntesis debe aclimatarse a condiciones de poca luz enriquecidas con azul a mayores profundidades. Mediciones realizadas por Sabrina Walz y Jonathan Richir en La STARESO (Station de Recherche Océanographiques et submarines), Córcega, Francia. |
 | - Espectros de PAR por encima del dosel (línea roja) o por debajo del dosel (línea negra) normalizados a 870 nm. Los espectros demuestran cómo la absorción foliar afecta notablemente la relación de intensidad “visible/rojo lejano”. Los fotorreceptores fitocromáticos detectan especialmente la relación rojo/rojo lejano. Estos fotorreceptores desencadenan muchos procesos vegetales. |
 | - Espectros de reflectancia de una hoja verde y roja (que contiene antocianinas). El máximo a 550 nm del espectro verde corresponde al llamado “espacio verde” de las hojas, en el que la absorción de pigmentos es baja. La línea roja muestra cómo el espacio verde desaparece en presencia de antocianinas que filtran la luz. |
 | - Espectros de emisión de fluorescencia de hojas de hiedra normalizados a su longitud de onda máxima. La fluorescencia a una longitud de onda < 700 nm disminuye desde la hoja verde claro hasta la hoja verde oscuro, probablemente debido a una mayor reabsorción de fluorescencia dentro de la muestra (Buschmann C (2007) Photosynth Res 92, 261–271). |
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