Suministros de laboratorio Kasalab le ofrece Sistema de fluorescencia de clorofila IMAGING-PAM Series M entre su amplia gama de equipos para laboratorio para la venta en Colombia.
La familia IMAGING-PAM comprende las versiones MAXI, MINI y MICROSCOPY. Las diferentes versiones utilizan la misma unidad de control múltiple IMAG-CG. Además, la misma cámara puede utilizarse para diferentes versiones. Este modularidad permite cambiar de forma sencilla y económica entre las distintas aplicaciones y aumentos que ofrece la serie M de IMAGING-PAM. Las versiones MAXI y MINI se pueden combinar con el sistema de intercambio de gases GFS-3000 y, de esta manera, integran información espacial detallada sobre la fotosíntesis con un análisis exacto de la fijación de carbono fotosintético. Recientemente, se ha añadido a la versión MAXI un método avanzado para crear imágenes tridimensionales de plantas. Esta nueva configuración abre la posibilidad de proyectar datos de análisis de fluorescencia sobre la imagen tridimensional de la planta, de modo que se pueda analizar la fotosíntesis en el contexto de la arquitectura de toda la planta.
La nueva integración de un escáner 3D de precisión en la probada versión MAXI del fluorómetro IMAGING-PAM combina el análisis de pulsos de saturación con el conocimiento del tamaño, número, posición y ángulo de las hojas. Como resultado, se puede considerar la intensidad de luz efectiva por unidad de superficie foliar cuando se evalúan los efectos de la luz en la fotosíntesis o la fotoinhibición.
La configuración 3D proporciona una multitud de datos morfológicos adicionales para el fenotipado estructural de las plantas. Juntos, los parámetros morfológicos y los parámetros funcionales caracterizados fluorométricamente forman un nuevo ámbito en el fenotipado de plantas.
La fluorescencia de la clorofila es un indicador muy sensible de la fotosíntesis. La información cuantitativa sobre el rendimiento cuántico de la conversión de energía fotosintética se obtiene mediante la fluorometría PAM y el método de pulso de saturación (Schreiber U (2004) Pulse-Amplitude-Modulation (PAM) Fluorometry and Saturation Pulse Method: An Overview, pp. 279-319. Kluwer Academic Publishers, Dordrecht, Países Bajos) .
Las mediciones de fluorescencia pueden generar una amplia gama de parámetros fotosintéticos, lo que proporciona información sobre el estado fisiológico de todos los organismos fotosintéticamente activos, incluidas plantas superiores, musgos y helechos, así como diversos tipos de algas, fitoplancton y biopelículas.
Con el avance de las cámaras CCD de alta sensibilidad y de los diodos emisores de luz (LED) extremadamente potentes, se ha hecho posible el desarrollo de los fluorómetros IMAGING-PAM, que no solo miden imágenes de la fluorescencia de la clorofila, sino que también son totalmente capaces de proporcionar todos los parámetros relevantes de la fluorescencia de la clorofila mediante el método de pulso de saturación. De esta manera, se pueden obtener imágenes de la actividad fotosintética y sus variaciones espaciotemporales.
Todos los fluorómetros IMAGING-PAM proporcionan imágenes de 17 parámetros diferentes. El parámetro de fluorescencia Ft se controla de forma continua. Fo y Fm se evalúan tras la adaptación a la oscuridad, lo que sirve como referencia para el análisis de extinción de la fluorescencia mediante el método de pulso de saturación.
Además de Fv/Fm, se pueden obtener imágenes del rendimiento cuántico de PS II después de la aclimatación a la oscuridad, también del rendimiento cuántico de PS II durante la iluminación, Y(II), y de los rendimientos cuánticos de disipación de energía regulada y no regulada, Y(NPQ), Y(NO), así como de la tasa aparente de transporte de electrones (ETR y PS).
Se proporciona una rutina para medir una imagen de absortividad PAR para las versiones MAXI y MINI del IMAGING-PAM (imagen Abs. basada en imágenes de NIR y remisión de luz roja). A partir de este parámetro también se calcula la tasa aparente de fotosíntesis y ya no es necesario utilizar el valor medio de absortividad PAR conocido comúnmente de 0,84 (ETR) para todas las áreas.
El parámetro PS/50 se muestra para representar la fotosíntesis aparente con ayuda del código de color falso que también se utiliza para los demás parámetros de la fotosíntesis.
La nueva versión 3D de IMAGING-PAM es especialmente adecuada para mediciones precisas de partes aéreas completas de plantas de muestra. Mide la altura exacta de las hojas y proporciona una descripción numérica clara de hojas individuales (tamaño, forma, ángulo, punto de equilibrio) y plantas enteras (radio de roseta, área de superficie y número de hojas).
Las versiones MAXI, MINI y MICROSCOPY están disponibles en varias configuraciones para diferentes aplicaciones, que difieren en geometrías ópticas y longitudes de onda de excitación. Mientras que la luz de excitación azul se utiliza normalmente para la obtención de imágenes de fluorescencia de plantas superiores y algas, se recomienda la excitación rojo-anaranjada para las cianobacterias.
Los cabezales de medición también pueden equiparse con LED especiales y conjuntos de filtros para obtener imágenes de fluorescencia de moléculas indicadoras como GFP. El uso de LED de potencia permite intensidades actínicas de hasta 5000 μmol m -2 s -1 (según el miembro de la Serie M y la configuración).
Para la medición de suspensiones se encuentran disponibles placas de filtro adicionales que mejoran la calidad de la imagen incluso con superficies reflectantes. Para mediciones PSII en condiciones de luz ambiental también es posible la comunicación con nuestro fotómetro universal ULM-500, de modo que los valores de luz en tiempo real se pueden transferir directamente al archivo de informe IMAGING-PAM.
Para la combinación de diferentes técnicas de medición como por ejemplo el intercambio de gases, hay adaptadores disponibles de modo que la obtención de imágenes PSII también se puede realizar bajo control climático combinado.
| Unidad de control múltiple | Imagen-CG | |||||||
|---|---|---|---|---|---|---|---|---|
| Cabezal de medición | IMAG-MAX/L (azul) | IMAG-MAX/LR (rojo) | IMAG-MIN/B (azul) | IMAG-MIN/R (rojo) | IMAG-MIN/GFP (GFP) | IMAG-L470M5 (azul) | IMAG-L625M5 (rojo anaranjado) | IMAG-RGB (verde rojo azul) |
| Cámara CCD y lentes | IMAG-K7 (lente zoom K7-MAX/Z o lente fija IMAG-MAX/S) IMAG-K6 (lente fija K6-MAX) | IMAG-K7 (lente fija K7-MIN) IMAG-K6 (lente fija K6-MIN) | IMAG-K6 (lente fija K6-MIN y portaobjetos con filtro detector K6-MIN/FS) | Imagen-K6 | ||||
| Kit de montaje para cámara | K7-MAX/M o K6-MAX/M | K7-MIN/M o K6-MIN/M | ||||||
| Microscopio | IMAG-AXIOSCOPIO 5 | |||||||
| Montaje | IMAG-MAX/GS IMAG-MAX/B ST-101 IMAG-MAX/HF | IMÁGENES-MÍN/BK IMÁGENES-MÍN/ST IMÁGENES-S | ||||||
| Computadora | Imagen por ordenador | |||||||
| Opcional | IMÁGENES-MAX/F | incluido | ST-1010 | módulos reflectores adicionales IMAG-AX-REF | ||||
| Combinación de sistemas | Imagen-MAX/GWK1 | IMÁGENES-MIN/GFS | ||||||
